| 摘要 | 第9-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 前言 | 第12-26页 |
| 1.1 人iPS细胞简介 | 第12-15页 |
| 1.1.1 人iPS细胞的建立 | 第12-13页 |
| 1.1.2 iPS细胞技术的短期和长期应用 | 第13-14页 |
| 1.1.3 人iPS细胞作为细胞治疗剂 | 第14-15页 |
| 1.1.4 人iPS细胞治疗的安全性问题 | 第15页 |
| 1.2 A549细胞及人非小细胞肺癌治疗新方法简介 | 第15-17页 |
| 1.3 肿瘤干细胞简介 | 第17-21页 |
| 1.3.1 肿瘤的异质性与肿瘤干细胞概念的产生 | 第17-19页 |
| 1.3.2 癌症作为干细胞疾病 | 第19-21页 |
| 1.4 动物活体成像技术简介 | 第21-25页 |
| 1.4.1 动物活体成像技术的发展 | 第21-22页 |
| 1.4.2 光学成像技术简介 | 第22-25页 |
| 1.4.2.1 光学成像与非特异性成像剂 | 第22-23页 |
| 1.4.2.2 光学成像与受体特异性成像剂 | 第23-24页 |
| 1.4.2.3 光学成像中的其他成像剂 | 第24-25页 |
| 1.5 本论文研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-37页 |
| 2.1 实验材料、试剂、仪器 | 第26-28页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-37页 |
| 2.2.1 A549-RFP细胞的传代培养 | 第28-29页 |
| 2.2.2 A549-RFP细胞的冻存与复苏 | 第29页 |
| 2.2.3 人iPS细胞从有饲养层到无饲养层培养环境的过渡 | 第29-30页 |
| 2.2.4 人iPS细胞的无饲养层培养传代 | 第30-31页 |
| 2.2.5 人iPS细胞的冻存与复苏 | 第31-32页 |
| 2.2.6 裸鼠皮下细胞移植瘤模型的建立 | 第32-33页 |
| 2.2.7 裸鼠尾静脉注射肺转移模型建立 | 第33-34页 |
| 2.2.8 小动物活体荧光成像系统的使用 | 第34-37页 |
| 第三章 结果与分析 | 第37-64页 |
| 3.1 共培养的A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞的形态特征及荧光观察 | 第37-39页 |
| 3.2 A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞融合 | 第39-44页 |
| 3.2.1 A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞的细胞融合仪电融合 | 第39-43页 |
| 3.2.2 A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞的离心融合 | 第43-44页 |
| 3.3 裸鼠A549细胞和iPS细胞的移植瘤模型 | 第44-48页 |
| 3.3.1 肿瘤体积生长曲线 | 第44-45页 |
| 3.3.2 不同处理的裸鼠及剥离肿瘤比较 | 第45-47页 |
| 3.3.3 肿瘤组织荧光观察 | 第47-48页 |
| 3.4 活体荧光成像 | 第48-62页 |
| 3.4.1 裸鼠A549细胞和iPS细胞的移植瘤模型建立及肿瘤体积生长曲线 | 第48-49页 |
| 3.4.2 肿瘤动物模型的活体成像观察 | 第49-50页 |
| 3.4.3 活体成像系统检测A549细胞和ips细胞在裸鼠体内的的转移 | 第50-62页 |
| 3.4.3.1 成瘤11周裸鼠荧光蛋白表达的活体成像检测 | 第50-55页 |
| 3.4.3.2 成瘤12周裸鼠荧光蛋白表达的活体成像检测 | 第55-59页 |
| 3.4.3.3 成瘤14周裸鼠荧光蛋白表达的活体成像检测 | 第59-61页 |
| 3.4.3.4 肿瘤组织切片中的可能共表达GFP和RFP的细胞 | 第61-62页 |
| 3.5 裸鼠尾静脉注射肺转移模型建立 | 第62-64页 |
| 第四章 讨论 | 第64-68页 |
| 4.1 共培养的A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞的形态特征的讨论 | 第64页 |
| 4.2 A549-RFP细胞和iPS-GFP细胞融合结果讨论 | 第64-65页 |
| 4.3 裸鼠A549细胞和iPS细胞的移植瘤模型的讨论 | 第65-66页 |
| 4.4 活体荧光成像观测移植瘤中A549细胞和iPS细胞转移讨论 | 第66-68页 |
| 第五章 总结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
