| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 缩略语 | 第13-15页 |
| 第一部分 文献综述 | 第15-27页 |
| 1.1 钙信号研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1.1 感知钙信号 | 第15页 |
| 1.1.2 细胞内Ca~(2+)浓度调节 | 第15-17页 |
| 1.1.3 钙信号感受蛋白 | 第17-19页 |
| 1.2 干旱胁迫下钙信号的作用 | 第19-22页 |
| 1.2.1 干旱胁迫下钙离子通过与ABA信号互作参与气孔关闭 | 第19-20页 |
| 1.2.2 钙信号通过依赖于ABA的信号传导途径引起的磷酸化作用参与气孔关闭的调节 | 第20-21页 |
| 1.2.3 干旱胁迫下钙离子调控植物水分利用率 | 第21-22页 |
| 1.2.4 干旱胁迫下钙离子参与植物叶片活性氧的清除 | 第22页 |
| 1.3 植物PEPC功能分析 | 第22-23页 |
| 1.4 转C_4-PEPC植物研究进展 | 第23-24页 |
| 1.5 高表达转玉米C_4-PEPC水稻高光效的生理机制研究 | 第24页 |
| 1.6 选题依据及意义 | 第24-26页 |
| 1.7 技术路线流程图 | 第26-27页 |
| 第二部分 外源Ca~(2+)对PEG处理下转C_4-PEPC基因水稻(Oryza sativa L)光合生理的调节 | 第27-41页 |
| 2.1 材料与方法 | 第27-30页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第27页 |
| 2.1.2 干旱胁迫处理 | 第27-28页 |
| 2.1.3 叶片相对含水量测定 | 第28页 |
| 2.1.4 净光合速率、气孔导度和胞间二氧化碳浓度的测定 | 第28页 |
| 2.1.5 叶片总钙离子含量测定 | 第28页 |
| 2.1.6 可溶性蛋白含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.1.7 磷酸烯醇式丙酮酸羧化酶活性测定 | 第29页 |
| 2.1.8 总RNA提取和Real Time PCR分析 | 第29页 |
| 2.1.9 统计与分析 | 第29-30页 |
| 2.2 结果与分析 | 第30-37页 |
| 2.2.1 不同浓度外源Ca~(2+)对PEG处理和复水阶段WT和PC水稻叶片相对含水量的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.2 不同浓度外源Ca~(2+)对PEG处理和复水阶段WT和PC水稻光合参数的影响 | 第31-34页 |
| 2.2.3 不同浓度外源Ca~(2+)对PEG处理和复水阶段WT和PC水稻叶片内源钙的变化 | 第34-35页 |
| 2.2.4 高浓度Ca~(2+)处在PEG胁迫下提高了转基因水稻的PEPC酶活性 | 第35-36页 |
| 2.2.5 PEG胁迫下高浓度钙离子降低了转基因水稻的PEPC基因表达和蛋白含量 | 第36-37页 |
| 2.3 讨论 | 第37-41页 |
| 第三部分 内源钙参与调控PEG-6000胁迫下转C_4型PEPC基因水稻(Oryza sativa. L)的耐旱性 | 第41-69页 |
| 3.1 材料与方法 | 第42-45页 |
| 3.1.1 植物材料与培养条件 | 第42页 |
| 3.1.2 干旱处理以及抑制剂处理方法 | 第42-43页 |
| 3.1.3 水稻干旱胁迫下光合参数测定 | 第43页 |
| 3.1.4 一氧化氮,内源钙,过氧化氢和脱落酸测定 | 第43页 |
| 3.1.5 叶片超氧阴离子产生速率测定 | 第43-44页 |
| 3.1.6 抗氧化酶活性及丙二醛(MDA)含量的测定 | 第44页 |
| 3.1.7 叶片钙调素含量测定 | 第44页 |
| 3.1.8 PEPC酶活性测定 | 第44页 |
| 3.1.9 荧光定量PCR | 第44-45页 |
| 3.1.10 统计与分析 | 第45页 |
| 3.2 结果与分析 | 第45-63页 |
| 3.2.1 PEG胁迫下转PEPC水稻表现出一定的耐旱性 | 第45-47页 |
| 3.2.2 内源钙参与PC响应早期干旱胁迫反应 | 第47-52页 |
| 3.2.3 NO和H_2O_2参与主要由内源钙调控的信号途径的PC水稻耐旱性 | 第52-55页 |
| 3.2.4 PC水稻PEPC基因表达和酶活性受内源钙调控 | 第55-57页 |
| 3.2.5 PEG胁迫内源钙诱导PC叶片SOD和CAT活性提高 | 第57-60页 |
| 3.2.6 PEG胁迫处理诱导PC水稻叶片多种干旱诱导相关转录因子和蛋白激酶基因表达,并受内源钙调控 | 第60-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63-69页 |
| 第四部分 内源钙通过H_2O_2和NO参与下游蛋白质磷酸化途径调控转C_4型PEPC基因水稻PEPC酶活性 | 第69-77页 |
| 4.1 材料与方法 | 第69-70页 |
| 4.1.1 植物材料与培养 | 第69-70页 |
| 4.1.2 干旱处理和抑制剂处理方法 | 第70页 |
| 4.1.3 体外总蛋白激酶和PEPCK活性测定 | 第70页 |
| 4.2 结果与分析 | 第70-74页 |
| 4.2.1 水稻叶片总蛋白激酶和PEPCK蛋白激酶在干旱胁迫下的活性变化 | 第71-72页 |
| 4.2.2 内源钙参与干旱胁迫下转C_4-PEPC基因水稻叶片总蛋白激酶活性调节,并调控水稻PEPCK活性 | 第72-73页 |
| 4.2.3 过氧化氢和一氧化氮参与内源钙调控的PEG胁迫下总蛋白激酶和PEPCK活性增加 | 第73-74页 |
| 4.3 讨论 | 第74-77页 |
| 参考文献 | 第77-89页 |
| 全文总结 | 第89-91页 |
| 致谢 | 第91-93页 |
| 硕士攻读期间发表论文 | 第93页 |
