中文摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
前言 | 第13-17页 |
研究现状、成果 | 第13-15页 |
研究目的、方法 | 第15-17页 |
一、外周血中Th17、Treg细胞及相关细胞因子的表达 | 第17-37页 |
1.1 对象和方法 | 第17-23页 |
1.1.1 实验分组,外周血标本的获得、分离、保存 | 第17-18页 |
1.1.2 外周血单个核细胞分离 | 第18页 |
1.1.3 流式细胞学检测外周血中Th17细胞表达水平 | 第18-19页 |
1.1.4 流式细胞学检测外周血中Treg细胞表达水平 | 第19页 |
1.1.5 ELISA法检测外周血中IL-6和TNF-β表达水平 | 第19-23页 |
1.1.6 统计方法 | 第23页 |
1.2 结果 | 第23-30页 |
1.2.1 患者的基本资料及免疫指标分析 | 第23-24页 |
1.2.2 外周血中Th17、Treg细胞表达水平 | 第24-25页 |
1.2.3 外周血中IL-6和TGF-β表达水平 | 第25-30页 |
1.3 讨论 | 第30-35页 |
1.3.1 胸腺瘤患者一般情况及免疫指标差异分析 | 第30-32页 |
1.3.2 胸腺瘤患者外周血中Th17细胞和Treg细胞的含量 | 第32-34页 |
1.3.3 胸腺瘤患者外周血中IL-6和TGF-β水平 | 第34-35页 |
1.3.4 外周血中Th17、Treg细胞与细胞因子IL-6、TGF-β之间的关系 | 第35页 |
1.4 小结 | 第35-37页 |
二、胸腺瘤中Th17、Treg细胞及相关转录因子的表达 | 第37-64页 |
2.1 对象和方法 | 第37-47页 |
2.1.1 实验分组、标本处理 | 第37-38页 |
2.1.2 仪器与试剂 | 第38-39页 |
2.1.3 免疫组化双染检测胸腺瘤中Th17细胞的含量 | 第39-41页 |
2.1.4 免疫组化双染检测胸腺瘤中Treg细胞的含量 | 第41-42页 |
2.1.5 免疫组化检测胸腺瘤中RORγt和Foxp3蛋白的含量 | 第42-44页 |
2.1.6 RT-PCR检测胸腺瘤中RORγt和Foxp3基因的含量 | 第44-47页 |
2.1.7 统计方法 | 第47页 |
2.2 结果 | 第47-58页 |
2.2.1 患者的基本资料 | 第47页 |
2.2.2 胸腺瘤中Th17细胞和Treg细胞的含量 | 第47-54页 |
2.2.3 胸腺瘤中RORγt和Foxp3蛋白的表达水平 | 第54页 |
2.2.4 胸腺瘤中RORγt和Foxp3基因的表达水平 | 第54-58页 |
2.3 讨论 | 第58-63页 |
2.3.1 胸腺瘤中Th17细胞和Treg细胞的含量 | 第59-61页 |
2.3.2 胸腺瘤中RORγt、Foxp3基因和蛋白的表达水平 | 第61-62页 |
2.3.3 Th17、Treg细胞的含量与IL-6、TGF-β、RORγt、Foxp3之间的关系 | 第62-63页 |
2.4 小结 | 第63-64页 |
三、胸腺瘤细胞对Th17、Treg细胞分化的影响 | 第64-79页 |
3.1 对象和方法 | 第64-68页 |
3.1.1 细胞系来源与培养方法 | 第64-65页 |
3.1.2 ELISA法检测Thy0517细胞培养液中的细胞因子 | 第65-66页 |
3.1.3 Thy0517细胞与健康人外周血淋巴细胞共培养 | 第66-68页 |
3.1.4 统计学方法 | 第68页 |
3.2 结果 | 第68-72页 |
3.2.1 Thy0517细胞培养液细胞因子分泌情况 | 第68-70页 |
3.2.2 Thy0517细胞对人CD4+T淋巴细胞分化的影响 | 第70-72页 |
3.3 讨论 | 第72-77页 |
3.3.1 胸腺瘤细胞系Thy0517的外分泌功能 | 第73-74页 |
3.3.2 胸腺瘤细胞系Thy0517具有影响CD4细胞分化的功能 | 第74-76页 |
3.3.3 细胞共培养方式选择及本实验的局限性 | 第76-77页 |
3.4 小结 | 第77-79页 |
全文结论 | 第79-81页 |
论文创新点 | 第81-82页 |
参考文献 | 第82-87页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第87-88页 |
附录 | 第88-92页 |
综述 调节性T细胞和Th17细胞失衡在重症肌无力中的研究进展 | 第92-105页 |
综述参考文献 | 第100-105页 |
致谢 | 第105-107页 |
个人简历 | 第107页 |