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猪伪狂犬病毒gE蛋白抗体快速检测方法

摘要第10-11页
ABSTRACT第11页
缩略词表(Abbreviation)第12-13页
1 前言第13-24页
    1.1 研究问题的由来第13-14页
        1.1.1 猪伪狂犬病的控制与监测第13页
        1.1.2 猪伪狂犬病毒清除计划第13-14页
    1.2 文献综述第14-24页
        1.2.1 猪伪狂犬病第14-17页
            1.2.1.1 PR病原学第14-15页
            1.2.1.2 猪伪狂犬病流行病学第15页
            1.2.1.3 PRV基因组及gE糖蛋白第15-16页
            1.2.1.4 PRV流行毒株第16-17页
        1.2.2 猪伪狂犬病检测方法第17-19页
            1.2.2.1 猪伪狂犬检测方法概述第17页
            1.2.2.2 乳胶凝集试验第17-18页
            1.2.2.3 酶联免疫吸附试验第18页
            1.2.2.4 免疫胶体金层析实验第18-19页
        1.2.3 免疫层析技术第19-22页
            1.2.3.1 基于膜的横向免疫层析第19-20页
            1.2.3.2 胶体金免疫层析第20-21页
            1.2.3.3 免疫胶体金技术第21-22页
        1.2.4 磁珠介绍第22-23页
            1.2.4.1 磁珠简介第22页
            1.2.4.2 免疫磁珠第22-23页
        1.2.5 研究目的和意义第23-24页
2 伪狂犬病毒gE蛋白原核表达与纯化第24-33页
    2.1 实验材料第24-27页
        2.1.1 毒株、菌株和质粒第24-25页
        2.1.3 主要试剂及耗材第25-26页
        2.1.4 主要仪器设备第26-27页
    2.2 实验方法第27-29页
        2.2.1 质粒鉴定和保存第27页
        2.2.2 预表达第27页
        2.2.3 大量表达第27页
        2.2.4 镍柱亲和层析纯化第27-28页
        2.2.5 蛋白浓度测定第28页
        2.2.6 Westernblot第28-29页
    2.3 蛋白表达纯化第29-33页
        2.3.1 质粒鉴定和转化结果第29页
        2.3.2 预表达结果第29-30页
        2.3.3 大量表达和纯化结果第30-31页
        2.3.4 蛋白浓度测定第31-32页
        2.3.5 Westernblot结果第32-33页
3 PRVgE蛋白抗体间接ELISA方法建立第33-43页
    3.1 实验材料第33-34页
        3.1.1 包被抗原及血清第33页
        3.1.2 主要试剂耗材第33页
        3.1.3 主要试剂配方第33-34页
    3.2 实验方法第34-37页
        3.2.1 免疫条件优化第35-36页
            3.2.1.1 最佳包被浓度与血清稀释倍数的确定第35页
            3.2.1.2 最佳酶标二抗浓度的确定第35页
            3.2.1.3 最佳包被缓冲液第35页
            3.2.1.4 封闭条件的优化第35-36页
        3.2.2 Cut-off值的判定第36页
        3.2.3 gE蛋白抗体间接ELISA特异性第36页
        3.2.4 gE蛋白抗体间接ELISA敏感性第36页
        3.2.5 gE蛋白抗体间接ELISA重复性及保存实验第36页
        3.2.6 重组gE蛋白抗体间接ELISA与商品化试剂盒比较第36-37页
    3.3 间接ELISA方法建立结果第37-43页
        3.3.1 免疫条件优化结果第37-39页
            3.3.1.1 方阵滴定结果第37页
            3.3.1.2 包被条件优化结果第37-38页
            3.3.1.3 二抗稀释度的优化第38页
            3.3.1.4 封闭条件的优化第38-39页
        3.3.2 Cut-off值判定结果第39-40页
        3.3.3 间接ELISA特异性实验结果第40页
        3.3.4 敏感性实验结果第40页
        3.3.5 重复性及保存实验结果第40-41页
        3.3.6 实际样品实验结果第41-43页
4 免疫胶体金层析方法的建立第43-52页
    4.1 材料和仪器第43页
        4.1.1 实验材料第43页
        4.1.2 主要试剂第43页
        4.1.3 主要仪器耗材第43页
    4.2 实验方法第43-47页
        4.2.1 实验原理第43-44页
        4.2.2 胶体金垫的制备第44-46页
            4.2.2.1 胶体金颗粒的制备及表征第44-45页
            4.2.2.2 免疫胶体金标记条件的优化第45页
            4.2.2.3 免疫胶体金的标记及粗纯化第45-46页
            4.2.2.4 免疫胶体金垫的制备第46页
        4.2.3 样品垫及吸水垫的制备第46页
        4.2.4 NC膜的选择及划线第46页
        4.2.5 试纸条装配及免疫方法的初步建立第46页
        4.2.6 敏感性实验第46页
        4.2.7 特异性实验第46-47页
    4.3 胶体金免疫层析方法结果第47-52页
        4.3.1 胶体金合成结果第47-48页
        4.3.2 免疫胶体金条件确定第48-49页
        4.3.3 免疫胶体金制备结果第49页
        4.3.4 试纸条制备结果第49-50页
        4.3.5 敏感性实验结果第50-51页
        4.3.6 特异性实验结果第51-52页
5 免疫磁性微粒检测方法的建立第52-60页
    5.1 实验材料及仪器设备第52页
        5.1.1 主要实验材料第52页
        5.1.2 主要试剂第52页
        5.1.3 仪器设备第52页
    5.2 实验原理第52-53页
    5.3 实验方法第53-55页
        5.3.1 免疫磁珠的制备第53页
            5.3.1.1 磁珠表面羧基活化第53页
            5.3.1.2 磁珠与gE抗原蛋白的共价偶联第53页
            5.3.1.3 免疫磁珠的封闭第53页
        5.3.2 免疫过程第53页
        5.3.3 磁珠检测PRVgE蛋白抗体的条件优化第53-55页
            5.3.3.1 磁珠用量优化第53-54页
            5.3.3.2 抗原蛋白量优化第54页
            5.3.3.3 二抗稀释度优化第54页
            5.3.3.4 血清孵育时间的优化第54页
            5.3.3.5 二抗孵育时间的优化第54页
            5.3.3.6 底物反应时间的优化第54-55页
        5.3.4 特异性实验第55页
        5.3.5 敏感性、线性和重复性实验第55页
    5.4 基于磁珠的快速检测方法实验结果第55-60页
        5.4.1 磁珠用量第55-56页
        5.4.2 偶联抗原量优化结果第56页
        5.4.3 二抗稀释度的优化第56页
        5.4.4 血清孵育时间优化第56-57页
        5.4.5 二抗孵育时间优化第57页
        5.4.6 底物反应时间第57-58页
        5.4.7 特异性、敏感性、重复性第58-60页
6 总结与讨论第60-61页
参考文献第61-69页
攻读硕士学位期间发表的学术论文第69-70页
致谢第70页

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