| 中文摘要 | 第3-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1.1 诱导相分离研究概述 | 第13-19页 |
| 1.1.1 诱导相分离概述 | 第13-15页 |
| 1.1.2 诱导相分离溶剂微观性质的研究 | 第15-17页 |
| 1.1.3 溶剂化致变色染料探针对溶剂极性的研究 | 第17-19页 |
| 1.2 中药活性成分分离提取技术 | 第19-22页 |
| 1.2.1 液液萃取法 | 第20页 |
| 1.2.2 固相萃取法 | 第20页 |
| 1.2.3 大孔吸附树脂分离纯化技术 | 第20页 |
| 1.2.4 硅胶柱层析法 | 第20页 |
| 1.2.5 膜分离技术 | 第20-21页 |
| 1.2.6 双水相萃取法 | 第21页 |
| 1.2.7 高速逆流色谱分离技术 | 第21页 |
| 1.2.8 超临界流体萃取技术 | 第21-22页 |
| 1.2.9 分子印迹技术 | 第22页 |
| 1.3 本课题的研究意义及主要内容 | 第22-24页 |
| 第二章 诱导相分离体系中溶剂特性的研究 | 第24-34页 |
| 2.1 引言 | 第24-25页 |
| 2.2 实验部分 | 第25-26页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第25-26页 |
| 2.2.2 诱导相分离过程 | 第26页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第26-31页 |
| 2.3.1 不同有机相含量的混合溶液中的氢键特征峰的变化 | 第26-27页 |
| 2.3.2 诱导相分离前后有机相特征键的变化 | 第27-28页 |
| 2.3.3 诱导相分离溶剂体系E_T值探查 | 第28-31页 |
| 2.3.4 其他诱导剂诱导分相前后溶液E_T值的变化 | 第31页 |
| 2.3.5 诱导相分离基本情况的探查 | 第31页 |
| 2.4 小结 | 第31-34页 |
| 第三章 诱导相分离萃取黄连中的生物碱 | 第34-45页 |
| 3.1 引言 | 第34-35页 |
| 3.2 实验部分 | 第35-37页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第35页 |
| 3.2.2 色谱条件 | 第35-36页 |
| 3.2.3 标准溶液的配制以及黄连样品的制备 | 第36页 |
| 3.2.4 诱导相分离萃取过程 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-44页 |
| 3.3.1 萃取分离条件优化 | 第37-43页 |
| 3.3.2 诱导相分离萃取黄连中的四种生物碱 | 第43-44页 |
| 3.4 结论 | 第44-45页 |
| 第四章 诱导相分离萃取黄芩中黄酮的分离容量测定 | 第45-54页 |
| 4.1 引言 | 第45-47页 |
| 4.2 实验部分 | 第47-48页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第47页 |
| 4.2.2 色谱与质谱条件 | 第47页 |
| 4.2.3 标准溶液的配制以及黄芩样品的准备 | 第47-48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-53页 |
| 4.3.1 黄芩指纹图谱的测定和相关成分的质谱确认 | 第48页 |
| 4.3.2 黄芩样品溶液提取和分离溶剂优化 | 第48-50页 |
| 4.3.3 诱导相分离黄芩中的糖苷和苷元 | 第50-53页 |
| 4.4 小结 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-66页 |
| 硕士期间发表的相关论文 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
