| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 缩略词表 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-17页 |
| 1.1 研究背景 | 第10-15页 |
| 1.1.1 海水淹溺型肺损伤 | 第10-13页 |
| 1.1.2 HO-1与肺损伤 | 第13-15页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第15页 |
| 1.3 本课题研究内容 | 第15-17页 |
| 第二章 海水淹溺型急性肺损伤动物模型的制备 | 第17-27页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第17页 |
| 2.2.2 材料及试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-21页 |
| 2.3.1 实验动物分组及模型建立 | 第18-19页 |
| 2.3.2 CT影像学检测 | 第19页 |
| 2.3.3 肺组织湿/干比与血气分析检测 | 第19页 |
| 2.3.4 肺组织大体形态观察及HE染色 | 第19-20页 |
| 2.3.5 肺损伤HE染色病理学评分 | 第20页 |
| 2.3.6 肺组织MDA含量、SOD活性测定 | 第20-21页 |
| 2.3.7 数据处理 | 第21页 |
| 2.4 实验结果 | 第21-25页 |
| 2.4.1 海水淹溺后小鼠死亡率 | 第21页 |
| 2.4.2 海水淹溺后小鼠的一般状态 | 第21-22页 |
| 2.4.3 海水淹溺后小鼠肺部CT影像学变化 | 第22-23页 |
| 2.4.4 海水淹溺后小鼠肺湿/干比及动脉血气电解质变化 | 第23-24页 |
| 2.4.5 海水淹溺后小鼠肺组织病理学变化及肺损伤评分 | 第24-25页 |
| 2.4.6 海水淹溺后肺组织SOD活性、MDA含量变化情况 | 第25页 |
| 2.5 本章小结 | 第25-27页 |
| 第三章 HO-1在海水淹溺型急性肺损伤自身修复过程中的作用 | 第27-41页 |
| 3.1 引言 | 第27-28页 |
| 3.2 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.2.1 实验动物 | 第28页 |
| 3.2.2 材料及试剂 | 第28页 |
| 3.2.3 实验仪器 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-34页 |
| 3.3.1 实验动物分组 | 第29页 |
| 3.3.2 肺组织大体形态观察及HE染色 | 第29-30页 |
| 3.3.3 肺损伤HE染色病理学评分 | 第30页 |
| 3.3.4 普鲁士蓝染色 | 第30页 |
| 3.3.5 天狼猩红染色 | 第30-31页 |
| 3.3.6 Masson’s Trichrome染色 | 第31页 |
| 3.3.7 免疫组化检测TGF-β1含量 | 第31-32页 |
| 3.3.8 蛋白印迹分析HO-1和TGF-β1蛋白含量 | 第32-34页 |
| 3.3.9 HO-1活性测定 | 第34页 |
| 3.3.10 数据处理 | 第34页 |
| 3.4 实验结果 | 第34-40页 |
| 3.4.1 在海水淹溺型急性肺损伤中HO-1活性及蛋白表达水平 | 第34-35页 |
| 3.4.2 HO-1抑制剂ZnPP对海水淹溺型急性肺损伤的影响 | 第35-36页 |
| 3.4.3 HO-1抑制剂ZnPP对铁离子含量的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.4 HO-1抑制剂ZnPP对海水淹溺型急性肺损伤自身修复的影响 | 第37页 |
| 3.4.5 TGF-β1与肺纤维化的关系 | 第37-40页 |
| 3.5 本章小结 | 第40-41页 |
| 主要结论与展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第48页 |
