| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-22页 |
| 1.1 镉污染的来源 | 第14-15页 |
| 1.2 镉对植物的毒害作用 | 第15-16页 |
| 1.2.1 根部 | 第15页 |
| 1.2.2 地上部 | 第15-16页 |
| 1.3 镉对植物生理生化的影响 | 第16页 |
| 1.4 植物对镉的吸收、转运和积累 | 第16-17页 |
| 1.5 代谢组学在研究植物逆境胁迫中的应用 | 第17-18页 |
| 1.5.1 代谢组学简介 | 第17页 |
| 1.5.2 代谢组学在植物逆境胁迫下的研究 | 第17-18页 |
| 1.6 植物代谢组学的研究方法 | 第18-20页 |
| 1.6.1 样品采集 | 第18页 |
| 1.6.2 样品预处理 | 第18-19页 |
| 1.6.3 代谢组学研究的技术手段 | 第19-20页 |
| 1.6.4 数据分析 | 第20页 |
| 1.6.5 代谢物的鉴定 | 第20页 |
| 1.7 本研究的意义与内容 | 第20-22页 |
| 第二章 基于HILIC和RPLCQ-TOF/MS技术的水稻代谢物分析 | 第22-33页 |
| 2.1 实验部分 | 第22-26页 |
| 2.1.1 仪器 | 第22页 |
| 2.1.2 试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 代谢物的提取 | 第23页 |
| 2.1.4 极性代谢物 | 第23-24页 |
| 2.1.5 非(弱)极性代谢物 | 第24-25页 |
| 2.1.6 质谱条件 | 第25-26页 |
| 2.1.7 数据处理和统计分析 | 第26页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第26-32页 |
| 2.2.1 LC-Q-TOF/MS分析系统的稳定性 | 第26-27页 |
| 2.2.2 代谢物提取方法的选择 | 第27-29页 |
| 2.2.3 水稻中代谢物分离检测鉴定结果分析 | 第29-32页 |
| 2.3 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 镉胁迫对水稻生长和镉含量的影响 | 第33-48页 |
| 3.1 材料与方法 | 第33-36页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第33页 |
| 3.1.2 材料培养 | 第33-34页 |
| 3.1.3 试验处理 | 第34页 |
| 3.1.4 测定指标和方法 | 第34-36页 |
| 3.1.5 数据统计分析 | 第36页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第36-47页 |
| 3.2.1 不同取样时间及镉浓度对水稻根长的影响 | 第36-38页 |
| 3.2.2 不同取样时间及镉浓度对水稻株高的影响 | 第38-40页 |
| 3.2.3 不同处理时间及镉浓度对水稻根部干重的影响 | 第40-42页 |
| 3.2.4 不同取样时间及镉处理对水稻地上部干重的影响 | 第42-44页 |
| 3.2.5 不同取样时间及镉处理对水稻镉含量的影响 | 第44-47页 |
| 3.3 本章小结 | 第47-48页 |
| 第四章 基于LC-Q-TOF/MS的水稻耐镉胁迫的代谢分析 | 第48-56页 |
| 4.1 材料与方法 | 第48-49页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第48页 |
| 4.1.2 试验设计 | 第48页 |
| 4.1.3 测定项目与方法 | 第48-49页 |
| 4.1.4 应用软件 | 第49页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第49-54页 |
| 4.2.1 水稻耐镉胁迫的代谢组学分析 | 第49页 |
| 4.2.2 水稻耐镉胁迫的差异代谢产物的鉴定 | 第49-52页 |
| 4.2.3 差异代谢产物参与的代谢途径 | 第52-54页 |
| 4.3 本章小结 | 第54-56页 |
| 第五章 全文结论 | 第56-58页 |
| 5.1 结论 | 第56-57页 |
| 5.1.1 基于HILIC和RPLCQ-TOF/MS技术的水稻代谢物分析 | 第56页 |
| 5.1.2 镉胁迫对水稻生长和镉含量的影响 | 第56页 |
| 5.1.3 基于LC-Q-TOF/MS的水稻耐镉胁迫的代谢分析 | 第56-57页 |
| 5.2 创新点 | 第57页 |
| 5.3 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 作者简历 | 第67-68页 |
