| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第1章 绪论 | 第12-30页 |
| 1.1 研究背景 | 第12-17页 |
| 1.1.1 低温生物医学工程的原理和应用 | 第12-13页 |
| 1.1.2 低温保存过程中对细胞的损伤因素 | 第13-15页 |
| 1.1.3 水凝胶用于组织工程和细胞保存 | 第15-17页 |
| 1.2 研究现状 | 第17-23页 |
| 1.2.1 细胞在添加、去除保护剂和冷冻过程中的跨膜水输运 | 第17-18页 |
| 1.2.2 水凝胶用于细胞冷冻过程中减少胞内冰形成 | 第18-22页 |
| 1.2.3 水凝胶用于细胞3D培养和组织工程中 | 第22-23页 |
| 1.3 课题研究内容与论文的结构安排 | 第23-24页 |
| 1.3.1 研究内容 | 第23页 |
| 1.3.2 各章内容安排 | 第23-24页 |
| 参考文献 | 第24-30页 |
| 第2章 猪的脂肪干细胞(pADSC)冷冻过程中水的跨膜传输和胞内冰晶形成概率研究 | 第30-44页 |
| 2.1 引言 | 第30-31页 |
| 2.2 Mazur水输运方程 | 第31-34页 |
| 2.3 Toner胞内冰形成概率 | 第34-36页 |
| 2.4 实验平台搭建 | 第36-37页 |
| 2.5 实验步骤 | 第37页 |
| 2.6 猪的脂肪干细胞(MSC)不同降温速率条件下水输运的研究 | 第37-39页 |
| 2.7 猪的脂肪干细胞(pADSC)形成胞内冰概率统计 | 第39-41页 |
| 2.8 总结 | 第41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 第3章 封装有干细胞的水凝胶胶囊在冷冻过程中抑制冰晶形成和促进玻璃化 | 第44-68页 |
| 3.1 引言 | 第44-46页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第46-59页 |
| 3.2.1 水凝胶微胶囊的制备工艺 | 第46-48页 |
| 3.2.2 可控制核壳厚度微胶囊的生成 | 第48-52页 |
| 3.2.3 低温保存微胶囊封装的细胞 | 第52-53页 |
| 3.2.4 细胞活性检测 | 第53-54页 |
| 3.2.5 细胞贴壁和增值 | 第54-56页 |
| 3.2.6 细胞功能性检测 | 第56-59页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第59-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 第4章 水-水-水模板化制备微胶囊工艺研究 | 第68-88页 |
| 4.1 引言 | 第68-69页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第69-76页 |
| 4.2.1 水-水-水模板化生成微胶囊装置设计 | 第69-71页 |
| 4.2.2 生成具有核壳结构微胶囊系统搭建 | 第71-73页 |
| 4.2.3 一组特定流速下微胶囊尺寸及结构特性 | 第73-74页 |
| 4.2.4 分别调整流速,对胶囊尺寸的影响 | 第74-76页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第76-83页 |
| 4.3.1 封装后破囊统计细胞存活率 | 第76-78页 |
| 4.3.2 猪脂肪干细胞(pADSCs)的封装与3D培养 | 第78页 |
| 4.3.3 猪脂肪干细胞(pADSCs) 3D培养后的功能检测 | 第78-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 第5章 纤维状水凝胶封装细胞的玻璃化保存和3D培养 | 第88-106页 |
| 5.1 引言 | 第88-90页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第90-94页 |
| 5.2.1 微纤维生成 | 第90-91页 |
| 5.2.2 内层和外层溶液流速变化对微纤维直径的影响 | 第91-93页 |
| 5.2.3 猪脂肪干细胞(pADSC)培养 | 第93页 |
| 5.2.4 封装猪脂肪干细胞(pADSC)实心微纤维的生成与收集 | 第93-94页 |
| 5.2.5 添加保护剂及低温保存 | 第94页 |
| 5.2.6 复温和去除低温保护剂 | 第94页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第94-99页 |
| 5.3.1 细胞存活率检测 | 第94-98页 |
| 5.3.2 猪脂肪干细胞(pADSCs)的封装与3D培养 | 第98-99页 |
| 5.3.3 结果与讨论 | 第99页 |
| 参考文献 | 第99-106页 |
| 第6章 总结与展望 | 第106-110页 |
| 6.1 本文总结 | 第106-107页 |
| 6.2 本文创新点 | 第107-108页 |
| 6.3 展望 | 第108-110页 |
| 致谢 | 第110-112页 |
| 在读期间发表的学术论文与取得的其他研究成果 | 第112-113页 |
