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IL-1β对兔髓核细胞生长及MMP-9、NGF表达的影响

摘要第3-5页
ABSTRACT第5-7页
第1章 前言第12-14页
第2章 实验材料与仪器第14-21页
    2.1 试验动物第14页
    2.2 实验材料第14-16页
        2.2.1 主要购置材料及试剂第14-15页
        2.2.2 主要仪器设备第15-16页
    2.3 主要配置溶液第16-21页
        2.3.1 原代细胞培养液第16页
        2.3.2 四甲基偶氮唑盐(MTT)第16-17页
        2.3.3 10%SDS第17页
        2.3.4 10%过硫酸胺(AP)第17页
        2.3.5 1.0mol/LTris·HCl (pH6.8)第17页
        2.3.6 1.5mol/LTris·HCl (pH8.8)第17页
        2.3.7 30%聚丙烯酰胺凝胶贮存液第17页
        2.3.8 电泳缓冲液第17-18页
        2.3.9 转膜缓冲液第18页
        2.3.10 TBS 缓冲液第18页
        2.3.11 20%Tween20第18页
        2.3.12 TBST 缓冲液第18页
        2.3.13 丽春红染液第18-19页
        2.3.14 封闭液第19页
        2.3.15 5×显影液第19页
        2.3.16 定影液第19页
        2.3.17 0.2%II 型胶原酶第19-20页
        2.3.18 G250 考马斯亮蓝溶液第20-21页
第3章 实验方法第21-28页
    3.1 兔髓核细胞的获取第21页
    3.2 髓核细胞的形态观察第21页
    3.3 髓核细胞的传代第21-22页
    3.4 髓核细胞的冻存第22页
    3.5 髓核细胞复苏第22-23页
    3.6 炎性细胞因子对髓核细胞的刺激第23页
    3.7 炎性细胞因子对椎间盘细胞 NGF 及 MMP-9 表达的影响第23-28页
        3.7.1 提取总蛋白第23-24页
        3.7.2 样品蛋白含量测定第24页
        3.7.3 配制 5%积层胶与 10%分离胶第24-25页
        3.7.4 蛋白质热变性及灌胶第25页
        3.7.5 上样及电泳第25页
        3.7.6 转膜第25-26页
        3.7.7 样品蛋白免疫反应第26页
        3.7.8 样品蛋白化学发光及曝光第26页
        3.7.9 膜再生第26页
        3.7.10 内参蛋白β-actin 免疫反应第26-27页
        3.7.11 图像分析第27页
        3.7.12 统计方法第27-28页
第4章 结果第28-32页
    4.1 兔髓核细胞形态学观察第28页
    4.2 MTT 方法发现不同浓度的 IL-1β不会对兔髓核细胞产生毒性作用第28-29页
    4.3 Western blot 检测 MMP-9 蛋白表达结果第29-30页
        4.3.1 兔髓核细胞表达 MMP-9 的量不会随着 IL-1β浓度的增加而增加第29页
        4.3.2 兔髓核细胞表达 MMP-9 的量随着 IL-1β作用时间的增加而增加第29-30页
    4.4 Western blot 检测 NGF-β蛋白表达结果第30-32页
        4.4.1 兔髓核细胞表达 NGF-β的量不会随着 IL-1β浓度的增加而增加第30-31页
        4.4.2 兔髓核细胞表达 NGF-β的量随着 IL-1β作用时间的增加而增加第31-32页
第5章 讨论第32-38页
    5.1 椎间盘的解剖结构紊乱与盘源性腰痛第32-33页
    5.2 炎性细胞因子与盘源性腰痛第33-34页
    5.3 NGF 与盘源性腰痛第34-35页
    5.4 基质金属蛋白酶与腰椎间盘的退变第35-36页
    5.5 盘源性腰痛的病理生理在影像学中的特征性表现第36-37页
    5.6 炎性因子与 NGF、MMP-926第37-38页
第6章 结论与展望第38-39页
    6.1 结论第38页
    5.2 展望第38-39页
致谢第39-40页
参考文献第40-43页
附图第43-46页
攻读学位期间的研究成果第46-47页
综述第47-57页
    参考文献第55-57页

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