摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一部分 文献综述 | 第9-20页 |
1 稻曲病研究进展 | 第9-14页 |
1.1 稻曲病的发生与危害 | 第9-10页 |
1.2 稻曲病菌生物学特性 | 第10页 |
1.3 稻曲病菌对碳源、氮源利用的偏好性 | 第10页 |
1.4 稻曲病的病害循环 | 第10-11页 |
1.5 稻曲病菌人工接种 | 第11页 |
1.6 稻曲病菌侵染过程 | 第11-12页 |
1.7 水稻对稻曲病菌侵染的响应 | 第12页 |
1.8 稻曲病菌基因组 | 第12-13页 |
1.9 稻曲病菌致病机理 | 第13页 |
1.10 稻曲病菌遗传转化 | 第13-14页 |
2 植物免疫与病原菌效应蛋白 | 第14-16页 |
2.1 PTI与ETI | 第14-15页 |
2.2 效应蛋白 | 第15-16页 |
3 酵母双杂交 | 第16-18页 |
3.1 蛋白互作技术 | 第16页 |
3.2 酵母双杂交原理及应用 | 第16-18页 |
4 论文的选题依据及意义 | 第18-20页 |
第二部分 稻曲病菌效应蛋白UV2169参与致病机理研究 | 第20-40页 |
1 材料与方法 | 第20-31页 |
1.1 实验材料 | 第20-22页 |
1.1.1 植物材料及稻曲病菌菌株 | 第20页 |
1.1.2 主要试剂 | 第20页 |
1.1.3 主要试剂盒 | 第20页 |
1.1.4 主要仪器设备 | 第20-21页 |
1.1.5 培养基的配制 | 第21-22页 |
1.2 实验方法 | 第22-31页 |
1.2.1 稻曲病菌人工接种 | 第22页 |
1.2.2 RNA提取及qRT-PCR | 第22-23页 |
1.2.3 外源添加Uv2169 siRNA培养稻曲病菌 | 第23页 |
1.2.4 载体构建 | 第23-27页 |
1.2.5 大肠杆菌及农杆菌感受态制作 | 第27页 |
1.2.6 大肠杆菌及农杆菌化学转化 | 第27-28页 |
1.2.7 农杆菌介导的稻曲病菌遗传转化及转化子鉴定 | 第28-29页 |
1.2.8 酵母双杂交cDNA文库构建 | 第29-30页 |
1.2.9 酵母双杂交cDNA文库质量检测 | 第30-31页 |
1.2.10 Uv2169候选互作蛋白筛选 | 第31页 |
2 结果与分析 | 第31-40页 |
2.1 Uv2169的表达模式 | 第31-32页 |
2.2 外源添加Uv2169 siRNA影响稻曲病菌菌丝生长与致病力 | 第32-33页 |
2.3 Uv2169稻曲病菌遗传转化子表型分析 | 第33-35页 |
2.4 Uv2169稻曲病菌遗传转化子致病力鉴定 | 第35-36页 |
2.5 稻曲病菌侵染水稻颖花的酵母双杂交文库构建 | 第36-38页 |
2.6 Uv2169互作蛋白筛选 | 第38-40页 |
第三部分 稻曲病菌的糖类偏好性研究 | 第40-48页 |
1 材料与方法 | 第40-41页 |
1.1 实验材料 | 第40页 |
1.1.1 植物及真菌菌株 | 第40页 |
1.1.2 主要试剂 | 第40页 |
1.1.3 主要培养基配制 | 第40页 |
1.2 实验方法 | 第40-41页 |
1.2.1 稻曲病菌及其他几个真菌培养 | 第40-41页 |
1.2.2 稻曲病菌孢子萌发 | 第41页 |
1.2.3 转录组测序 | 第41页 |
1.2.4 水稻人工接种 | 第41页 |
1.2.5 RNA提取和qRT-PCR | 第41页 |
2 结果与分析 | 第41-48页 |
2.1 水苏糖促进稻曲病菌菌落生长 | 第41-42页 |
2.2 水苏糖促进稻曲病菌孢子萌发与菌丝延长 | 第42-43页 |
2.3 水苏糖促进稻曲病菌生长的转录组学分析 | 第43-44页 |
2.4 水苏糖诱导稻曲病菌MFS家族基因表达 | 第44-45页 |
2.5 Uv8b 6977是候选水苏糖转运蛋白 | 第45-46页 |
2.6 糖转运蛋白基因在稻曲病菌侵染过程中的表达模式 | 第46-47页 |
2.7 水苏糖促进其他真菌生长 | 第47-48页 |
第四部分 结论与讨论 | 第48-51页 |
1 效应蛋白Uv2169参与稻曲病菌致病机理 | 第48-49页 |
2 稻曲病菌的糖类偏好性研究 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
致谢 | 第57-59页 |
附录1 实验所用引物 | 第59-60页 |
附录2 UV2169候选互作蛋白 | 第60-62页 |
附录3 稻曲病菌在水苏糖和蔗糖培养条件下的差异表达基因 | 第62-66页 |