| 中文摘要 | 第12-15页 |
| ABSTRACT | 第15-17页 |
| 符号说明 | 第18-19页 |
| 第一章 前言 | 第19-29页 |
| 1. 视网膜新生血管疾病 | 第19-23页 |
| 1.1 血管新生 | 第19页 |
| 1.2 视网膜新生血管疾病 | 第19-20页 |
| 1.3 视网膜新生血管的发生机制 | 第20-21页 |
| 1.4 手术治疗方案 | 第21页 |
| 1.5 药物治疗方案 | 第21-23页 |
| 2. 羟基酪醇 | 第23-27页 |
| 2.1 羟基酪醇的来源及其理化性质 | 第23-24页 |
| 2.2 羟基酪醇的提取与合成 | 第24-25页 |
| 2.3 羟基酪醇的生物活性 | 第25-27页 |
| 2.4 羟基酪醇与外源性血管生成抑制剂 | 第27页 |
| 3. 课题内容及重要意义 | 第27-29页 |
| 第二章 羟基酪醇对内皮细胞的作用 | 第29-47页 |
| 1. 实验材料 | 第29-33页 |
| 1.1 实验细胞 | 第29页 |
| 1.2 实验试剂 | 第29-30页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第30-31页 |
| 1.4 常用溶液配制方法 | 第31-33页 |
| 2. 实验方法 | 第33-38页 |
| 2.1 EA.hy926细胞的培养 | 第33页 |
| 2.2 CCK-8法测定羟基酪醇对EA.hy926细胞增殖的影响 | 第33-34页 |
| 2.3 细胞划痕法测定羟基酪醇对EA.hy926细胞迁移的影响 | 第34页 |
| 2.4 Matrigel法测定羟基酪醇对EA.hy926细胞管腔形成的影响 | 第34-35页 |
| 2.5 Western Blot法测定羟基酪醇对VEGF及VEGFR-2蛋白表达的影响 | 第35-37页 |
| 2.6 统计学处理 | 第37-38页 |
| 3. 实验结果 | 第38-44页 |
| 3.1 EA.hy926细胞的生长形态 | 第38页 |
| 3.2 羟基酪醇对EA.hy926细胞增殖的影响 | 第38-39页 |
| 3.3 羟基酪醇对EA.hy926细胞迁移的影响 | 第39-41页 |
| 3.4 羟基酪醇对EA.hy926细胞管腔形成的影响 | 第41-42页 |
| 3.5 羟基酪醇对VEGF及VEGFR-2蛋白表达的影响 | 第42-44页 |
| 4. 实验讨论 | 第44-46页 |
| 4.1 CCK-8实验 | 第44-45页 |
| 4.2 细胞划痕实验 | 第45页 |
| 4.3 Matrigel管腔形成实验 | 第45页 |
| 4.4 Western Blot实验 | 第45-46页 |
| 5. 小结 | 第46-47页 |
| 第三章 羟基酪醇对CAM模型的作用 | 第47-56页 |
| 1. 实验材料 | 第47-48页 |
| 1.1 实验种蛋 | 第47页 |
| 1.2 实验试剂 | 第47-48页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第48页 |
| 2. 实验方法 | 第48-51页 |
| 2.1 供试液的配制 | 第48页 |
| 2.2 CAM模型的建立 | 第48-49页 |
| 2.3 分组给药 | 第49-50页 |
| 2.4 观察结果 | 第50页 |
| 2.5 统计学处理 | 第50-51页 |
| 3. 实验结果 | 第51-53页 |
| 3.1 等级评定结果 | 第51页 |
| 3.2 血管面积结果 | 第51-53页 |
| 4. 实验讨论 | 第53-55页 |
| 4.1 CAM模型 | 第53-54页 |
| 4.2 bFGF | 第54页 |
| 4.3 氢化可的松 | 第54-55页 |
| 4.4 明胶海绵 | 第55页 |
| 5. 小结 | 第55-56页 |
| 第四章 羟基酪醇对OIR模型的治疗作用 | 第56-79页 |
| 1. 实验材料 | 第56-58页 |
| 1.1 实验动物 | 第56-57页 |
| 1.2 实验试剂 | 第57页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第57-58页 |
| 2. 实验方法 | 第58-65页 |
| 2.1 OIR模型的建立 | 第58页 |
| 2.2 实验动物分组 | 第58页 |
| 2.3 给药方法 | 第58-59页 |
| 2.4 记录新生鼠生长状态 | 第59页 |
| 2.5 视网膜铺片 | 第59页 |
| 2.6 HE染色 | 第59-60页 |
| 2.7 免疫组化 | 第60-61页 |
| 2.8 Western Blot法检测视网膜VEGFA、VEGFR2及HIF-1α蛋白的表达 | 第61-63页 |
| 2.9 RT-PCR法检测视网膜VEGFA、VEGFR2及HIF-1α基因的表达 | 第63-65页 |
| 3. 实验结果 | 第65-75页 |
| 3.1 新生小鼠生长发育及体重变化 | 第65-66页 |
| 3.2 视网膜铺片 | 第66-68页 |
| 3.3 HE染色 | 第68-69页 |
| 3.4 免疫组化 | 第69-71页 |
| 3.5 VEGFA、VEGFR-2及HIF-1α蛋白表达情况 | 第71-73页 |
| 3.6 VEGFA、VEGFR-2及HIF-1α mRNA表达情况 | 第73-75页 |
| 4. 实验讨论 | 第75-78页 |
| 4.1 OIR模型 | 第75-76页 |
| 4.2 视网膜结构 | 第76-77页 |
| 4.3 VEGFA、VEGFR-2与HIF-1α | 第77-78页 |
| 5. 小结 | 第78-79页 |
| 总结与展望 | 第79-81页 |
| 1. 全文总结 | 第79-80页 |
| 2. 展望 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第88页 |
