葡萄酒中9种单体酚的分析与检测方法的研究
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 1 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 多酚化合物概况 | 第11页 |
| 1.2 多酚化合物的作用 | 第11-12页 |
| 1.3 多酚化合物的分类 | 第12-17页 |
| 1.3.1 非类黄酮 | 第12-14页 |
| 1.3.2 类黄酮 | 第14-17页 |
| 1.4 多酚化合物前处理方法 | 第17-18页 |
| 1.4.1 溶剂萃取法 | 第17页 |
| 1.4.2 超声辅助提取法和微波辅助提取法 | 第17页 |
| 1.4.3 超高压提取法 | 第17页 |
| 1.4.4 超临界流体萃取法 | 第17页 |
| 1.4.5 酶提取法 | 第17-18页 |
| 1.5 多酚化合物检测手段 | 第18-20页 |
| 1.5.1 光谱法检测 | 第18页 |
| 1.5.2 紫外分光光度法 | 第18页 |
| 1.5.3 原子吸收光谱法 | 第18-19页 |
| 1.5.4 电化学分析方法 | 第19页 |
| 1.5.5 化学发光法 | 第19页 |
| 1.5.6 色谱分析方法 | 第19-20页 |
| 1.6 酚类物质在食品中的研究现状 | 第20页 |
| 1.7 本文研究意义及主要内容 | 第20-22页 |
| 1.7.1 研究意义 | 第20-21页 |
| 1.7.2 主要内容 | 第21-22页 |
| 2 实验部分 | 第22-27页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第22-24页 |
| 2.1.1 仪器 | 第22页 |
| 2.1.2 试剂 | 第22-24页 |
| 2.2 固相萃取法提取单体酚的条件选择 | 第24页 |
| 2.2.1 洗脱剂的选择 | 第24页 |
| 2.2.2 酒样 pH 值选择 | 第24页 |
| 2.2.3 洗脱剂体积的选择 | 第24页 |
| 2.3 液液萃取法提取单体酚的条件选择 | 第24-25页 |
| 2.3.1 萃取溶剂的选择 | 第25页 |
| 2.3.2 pH 值的选择 | 第25页 |
| 2.3.3 萃取溶剂体积的选择 | 第25页 |
| 2.3.4 萃取时间的选择 | 第25页 |
| 2.4 色谱条件的选择 | 第25-27页 |
| 2.4.1 检测波长的选择 | 第25页 |
| 2.4.2 流动相的选择 | 第25-26页 |
| 2.4.3 标准曲线的制备 | 第26页 |
| 2.4.4 样品预处理 | 第26页 |
| 2.4.5 色谱条件 | 第26页 |
| 2.4.6 加标回收率的测定 | 第26-27页 |
| 3 结果与讨论 | 第27-40页 |
| 3.1 固相萃取条件优化选择 | 第27-30页 |
| 3.1.1 洗脱剂的选择 | 第27-28页 |
| 3.1.2 酒样 pH 值的选择 | 第28-29页 |
| 3.1.3 洗脱液体积的选择 | 第29页 |
| 3.1.4 小结 | 第29-30页 |
| 3.2 液液萃取条件的优化选择 | 第30-33页 |
| 3.2.1 萃取溶剂的选择 | 第30-31页 |
| 3.2.2 pH 值的选择 | 第31页 |
| 3.2.3 乙酸乙酯体积选择 | 第31-32页 |
| 3.2.4 萃取时间的选择 | 第32-33页 |
| 3.2.5 小结 | 第33页 |
| 3.3 色谱条件的确定 | 第33-36页 |
| 3.3.1 流动相条件的确定 | 第33-35页 |
| 3.3.2 检测波长的选择 | 第35页 |
| 3.3.3 标准工作曲线制备 | 第35-36页 |
| 3.4 固相萃取和液液萃取比较选择 | 第36-40页 |
| 3.4.1 固相萃取各单体酚加标回收率的测定 | 第36页 |
| 3.4.2 液液萃取单体酚加标回收率的测定 | 第36-37页 |
| 3.4.3 两种萃取方法回收率的比较 | 第37-38页 |
| 3.4.4 其他实验条件的比较 | 第38页 |
| 3.4.5 标样和样品的重复性实验 | 第38页 |
| 3.4.6 样品的测定 | 第38-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-44页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第44-45页 |
| 致谢 | 第45-46页 |
