| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 前言 | 第10-15页 |
| 1.1 大豆异黄酮的结构及其生理学功能 | 第10-11页 |
| 1.1.1 大豆异黄酮结构及种类 | 第10页 |
| 1.1.2 大豆异黄酮的理化性质 | 第10页 |
| 1.1.3 大豆异黄酮的生理功能 | 第10-11页 |
| 1.2 大豆异黄酮转化菌的研究现状 | 第11-12页 |
| 1.2.1 大豆异黄酮的吸收与代谢 | 第11-12页 |
| 1.2.2 大豆异黄酮转化菌株的分离筛选与鉴定 | 第12页 |
| 1.3 大豆异黄酮代谢产物的生物学活性 | 第12-13页 |
| 1.4 大豆异黄酮代谢产物的合成及存在问题 | 第13页 |
| 1.5 微生物的耐氧驯化 | 第13-14页 |
| 1.6 研究目的及意义 | 第14-15页 |
| 第二章 雌马酚产生菌的分离筛选与耐氧驯化 | 第15-22页 |
| 2.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 2.1.1 菌株来源 | 第15页 |
| 2.1.2 培养基 | 第15页 |
| 2.1.3 药品与试剂 | 第15页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第15-16页 |
| 2.2 实验方法 | 第16-18页 |
| 2.2.1 菌株分离 | 第16页 |
| 2.2.2 高效液相检测 | 第16页 |
| 2.2.3 菌种鉴定 | 第16-17页 |
| 2.2.4 转化所得产物的分离纯化与结构鉴定 | 第17页 |
| 2.2.5 黄豆苷原代谢产物的手征性测定 | 第17页 |
| 2.2.6 菌株对底物最大转化能力测定 | 第17页 |
| 2.2.7 大豆异黄酮转化菌株的耐氧驯化 | 第17-18页 |
| 2.3 结果与分析 | 第18-21页 |
| 2.3.1 黄豆苷原转化菌株的分离与鉴定 | 第18-19页 |
| 2.3.2 代谢产物的质谱(ESI-MS)和核磁共振氢谱(1H-NMR) | 第19-20页 |
| 2.3.3 雌马酚的手征性测定 | 第20页 |
| 2.3.4 菌株 AUH-Julong365 对底物黄豆苷原最大转化能力测定 | 第20-21页 |
| 2.3.5 菌株 AUH-Julong365 的耐氧驯化 | 第21页 |
| 2.4 结论 | 第21-22页 |
| 第三章 O-Dma 产生菌的耐氧驯化及生物学特性研究 | 第22-31页 |
| 3.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 3.1.1 菌株来源 | 第23页 |
| 3.1.2 细菌生长及生理生化试验用培养基 | 第23页 |
| 3.1.3 药品与试剂 | 第23页 |
| 3.1.4 主要仪器设备 | 第23-24页 |
| 3.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 3.2.1 耐氧驯化 | 第24页 |
| 3.2.2 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 菌体形态观察 | 第24页 |
| 3.2.3 菌株生长特性 | 第24-25页 |
| 3.2.4 生理生化特性 | 第25页 |
| 3.2.5 驯化菌株 Aeroto-AUH-JLC140 基因组 DNA 提取 | 第25页 |
| 3.2.6 驯化菌株的 16S rDNA 序列分析 | 第25页 |
| 3.2.7 耐氧突变株 Aeroto- AUH-JLC140 的耐氧特性 | 第25-26页 |
| 3.3 结果与分析 | 第26-30页 |
| 3.3.1 耐氧驯化前后菌体形态比较 | 第26-27页 |
| 3.3.2 耐氧驯化前后菌体生长特性比较 | 第27-28页 |
| 3.3.3 耐氧驯化前后菌体生理生化特征比较 | 第28页 |
| 3.3.4 耐氧驯化前后菌株 16S rDNA 序列分析 | 第28-29页 |
| 3.3.5 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 耐氧能力分析 | 第29-30页 |
| 3.4 结论 | 第30-31页 |
| 第四章 O-Dma 产生菌耐氧突变株的有氧转化与调控研究 | 第31-38页 |
| 4.1 实验材料 | 第31页 |
| 4.1.1 药品与试剂 | 第31页 |
| 4.1.2 主要试验仪器与设备 | 第31页 |
| 4.2 实验方法 | 第31-32页 |
| 4.2.1 菌体转化效率计算方法 | 第31-32页 |
| 4.2.2 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 有氧转化动态 | 第32页 |
| 4.2.3 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 转化能力测定 | 第32页 |
| 4.2.4 刚果红染色 | 第32页 |
| 4.2.5 不同还原剂对耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 转化活性的影响 | 第32页 |
| 4.3 结果与分析 | 第32-36页 |
| 4.3.1 耐氧突变株 Aeroto- AUH-JLC140 对底物黄豆苷原的有氧转化 | 第32-33页 |
| 4.3.2 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 对底物黄豆苷原的转化动态 | 第33-34页 |
| 4.3.3 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 对底物黄豆苷原转化能力测定 | 第34-35页 |
| 4.3.4 耐氧突变株 Aeroto-AUH-JLC140 对底物黄豆苷原有氧转化调控 | 第35-36页 |
| 4.4 讨论 | 第36-37页 |
| 4.5 结论 | 第37-38页 |
| 第五章 O-Dma 产生菌耐氧突变株的耐氧机制 | 第38-42页 |
| 5.1 实验材料 | 第38页 |
| 5.1.1 药品与试剂 | 第38页 |
| 5.1.2 主要仪器设备 | 第38页 |
| 5.2 实验方法 | 第38-39页 |
| 5.2.1 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动驱氧策略 | 第38-39页 |
| 5.2.2 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动防氧策略 | 第39页 |
| 5.2.3 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动避氧策略 | 第39页 |
| 5.3 结果与分析 | 第39-41页 |
| 5.3.1 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动驱氧机制 | 第39-40页 |
| 5.3.2 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动防氧策略 | 第40-41页 |
| 5.3.3 耐氧突变菌株 Aeroto-AUH-JLC140 主动避氧策略 | 第41页 |
| 5.4 结论 | 第41-42页 |
| 创新点 | 第42-43页 |
| 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-49页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第49-50页 |
| 作者简历 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
