| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一章：真菌多糖免疫活性及机制研究进展 | 第11-47页 |
| ·真菌多糖来源及理化性质简介 | 第11-15页 |
| ·真菌多糖的种类 | 第11页 |
| ·真菌多糖的结构 | 第11-13页 |
| ·真菌多糖的结构对生物活性的影响 | 第13-15页 |
| ·分子量对活性的影响 | 第13页 |
| ·主链连接方式对生物活性的影响 | 第13-14页 |
| ·支链分支度对活性的影响 | 第14页 |
| ·支链基团及空间三维结构对活性的影响 | 第14-15页 |
| ·真菌多糖免疫活性及机制研究进展 | 第15-30页 |
| ·对非特异性和特异性免疫的调节作用 | 第16-21页 |
| ·对巨噬细胞的影响 | 第16-17页 |
| ·对树突状细胞的影响 | 第17-18页 |
| ·对自然杀伤细胞的作用 | 第18-19页 |
| ·对T、B淋巴细胞的影响 | 第19-20页 |
| ·对补体系统的影响 | 第20-21页 |
| ·真菌多糖受体及其信号级联反应 | 第21-29页 |
| ·真菌多糖的受体 | 第22-24页 |
| ·真菌多糖受体激活的信号级联反应 | 第24-29页 |
| ·多糖抗炎研究进展 | 第29-30页 |
| ·云芝糖肽及其免疫调节作用 | 第30-34页 |
| ·云芝糖肽免疫调节研究进展 | 第31-34页 |
| ·云芝糖肽的抗肿瘤活性 | 第31-32页 |
| ·云芝糖肽增强机体免疫力 | 第32-33页 |
| ·云芝糖肽的抗炎研究 | 第33-34页 |
| ·云芝糖肽免疫调节机制 | 第34页 |
| ·炎症和脂多糖LPS诱导的炎症反应机制 | 第34-45页 |
| ·LPS诱导的炎症反应信号通路 | 第35-39页 |
| ·巨噬细胞膜表面LPS受体 | 第35-36页 |
| ·LPS信号转导通路 | 第36-38页 |
| ·LPS信号转导的负反馈调节 | 第38-39页 |
| ·核转录因子NF-κB简介 | 第39-43页 |
| ·NF-κB家族 | 第40-41页 |
| ·iκB家族 | 第41-42页 |
| ·KK家族 | 第42-43页 |
| ·NF-κB调控的免疫与炎症反应信号通路 | 第43-45页 |
| ·本课题研究目的及意义 | 第45-47页 |
| 第二章：材料与方法 | 第47-65页 |
| ·材料 | 第47页 |
| ·试剂 | 第47页 |
| ·主要仪器 | 第47-48页 |
| ·器皿内毒素的去除 | 第48-49页 |
| ·样品贮备液的配制 | 第49页 |
| ·实验方法 | 第49-62页 |
| ·细胞形态观察 | 第49-50页 |
| ·细胞培养 | 第49页 |
| ·样品以及溶液的准备 | 第49-50页 |
| ·处理细胞 | 第50页 |
| ·细胞形态结果记录 | 第50页 |
| ·对IL-1β的双向调节作用 | 第50-52页 |
| ·细胞培养 | 第50页 |
| ·样品的准备 | 第50页 |
| ·处理细胞 | 第50页 |
| ·ELISA方法检测IL-1β的生成 | 第50-52页 |
| ·对PGE2 的双向调节作用 | 第52-53页 |
| ·细胞培养 | 第52页 |
| ·样品的准备 | 第52页 |
| ·处理细胞 | 第52页 |
| ·ELISA方法检测PGE2 的生成 | 第52-53页 |
| ·对COX-2 的调节作用 | 第53-56页 |
| ·试剂配制 | 第53-54页 |
| ·细胞培养 | 第54页 |
| ·样品的准备 | 第54-55页 |
| ·处理细胞 | 第55页 |
| ·电泳上样蛋白的制备 | 第55页 |
| ·SDS-PAGE | 第55页 |
| ·western blot检测COX-2 的表达 | 第55-56页 |
| ·对NF-κB核转位的调控（免疫荧光） | 第56-57页 |
| ·试剂配制 | 第56页 |
| ·细胞培养 | 第56页 |
| ·样品的准备 | 第56页 |
| ·处理细胞 | 第56-57页 |
| ·免疫荧光法观察NF-κB核转位 | 第57页 |
| ·对NF-κB核转位的调控（免疫印迹） | 第57-59页 |
| ·试剂配制 | 第57-58页 |
| ·细胞培养 | 第58页 |
| ·样品的准备 | 第58页 |
| ·处理细胞 | 第58页 |
| ·电泳上样蛋白的制备 | 第58页 |
| ·SDS-PAGE | 第58页 |
| ·Western Blot检测NF-κB的表达 | 第58-59页 |
| ·对iκB磷酸化的调控 | 第59-62页 |
| ·试剂配制 | 第59-60页 |
| ·细胞培养 | 第60页 |
| ·样品的准备 | 第60页 |
| ·处理细胞 | 第60页 |
| ·电泳上样蛋白的制备 | 第60-61页 |
| ·SDS-PAGE | 第61页 |
| ·Western blot检测iκB的表达 | 第61-62页 |
| ·对FITC-LPS结合细胞膜表面受体的竞争性抑制 | 第62页 |
| ·细胞培养 | 第62页 |
| ·样品的准备 | 第62页 |
| ·处理细胞 | 第62页 |
| ·流式细胞术检测FITC-LPS荧光强度 | 第62页 |
| 数据处理 | 第62-65页 |
| 第三章：云芝糖肽对炎症性因子IL-1β及PGE2，COX-2 限速酶的调节作用 | 第65-75页 |
| ·对细胞形态的影响 | 第66-67页 |
| ·对IL-1β的双向调节作用 | 第67-68页 |
| ·IL-1β标准曲线 | 第67页 |
| ·对IL-1β双向调节的量效关系 | 第67-68页 |
| ·对PGE2 的双向调节作用 | 第68-70页 |
| ·PGE2 标准曲线 | 第68-69页 |
| ·对PGE2 双向调节的量效关系 | 第69-70页 |
| ·对COX-2 的调节作用 | 第70-72页 |
| ·对COX-2 调节的量效关系 | 第70-71页 |
| ·对COX-2 调节的时效关系 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-75页 |
| 第四章：云芝糖肽对NF-κB信号通路的调控 | 第75-88页 |
| ·对NF-κB核转位的调控（免疫荧光） | 第76-77页 |
| ·对NF-κB核转位调控的量效关系（免疫印迹） | 第77-79页 |
| ·对NF-κB抑制蛋白iκB调控的研究 | 第79-81页 |
| ·对总iκB蛋白的量效调控 | 第80-81页 |
| ·对NF-κB抑制蛋白iκB调控的时效关系 | 第81-85页 |
| ·对总iκB的时效调控 | 第81-83页 |
| ·对磷酸化iκB的时效调控 | 第83-85页 |
| ·对LPS-FITC结合细胞的竞争性抑制作用 | 第85-86页 |
| ·讨论 | 第86-88页 |
| 总结与展望 | 第88-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-106页 |
| 攻读学位期间公开发表的论文 | 第106页 |