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抑制表皮生长因子受体重塑骨关节炎软骨稳态的效应和机制研究

致谢第5-6页
中文摘要第6-8页
Abstract第8-9页
缩略词第10-16页
绪论第16-21页
第一章 EGFR在小鼠骨关节炎模型中的作用第21-45页
    1.1 引言第21-22页
    1.2 实验试剂与仪器第22-27页
        1.2.1 材料和试剂第22-25页
        1.2.2 实验仪器第25-26页
        1.2.3 相关试剂的配制第26-27页
    1.3 实验方法第27-36页
        1.3.1 小鼠杂交与基因型鉴定第27-28页
        1.3.2 原代软骨细胞培养第28-29页
        1.3.3 软骨细胞传代培养第29页
        1.3.4 软骨细胞冻存第29-30页
        1.3.5 软骨细胞复苏第30页
        1.3.6 体外Egfr基因敲除与TGF-α处理第30页
        1.3.7 软骨细胞RNA提取第30-31页
        1.3.8 qPCR第31页
        1.3.9 软骨细胞蛋白提取第31-32页
        1.3.10 Western Blot第32-33页
        1.3.11 体内Egfr基因条件性敲除第33页
        1.3.12 小鼠内侧半月板切除术(Destabilization of Medial Meniscus, DMM)第33页
        1.3.13 小鼠膝关节组织包埋与切片第33-34页
        1.3.14 切片脱蜡第34页
        1.3.15 番红O/Fast Green染色第34页
        1.3.16 OARSI组织学评分第34-35页
        1.3.17 免疫组织化学第35-36页
        1.3.18 计数与统计第36页
    1.4 实验结果第36-43页
        1.4.1 获得Col2-creER~(T2); Egfr~(f/f)小鼠与Egfr~(f/f)小鼠第36-37页
        1.4.2 原代软骨细胞的分离第37页
        1.4.3 在原代软骨细胞中顺利敲除Egfr第37-38页
        1.4.4 EGFR激活影响软骨细胞表型第38-40页
        1.4.5 体内成功敲除软骨细胞Egfr第40-41页
        1.4.6 体内敲除软骨Egfr延缓小鼠骨关节炎进展第41-43页
    1.5 讨论第43-45页
第二章 抑制EGFR对软骨细胞表型的影响第45-60页
    2.1 引言第45-46页
    2.2 实验试剂与仪器第46-48页
        2.2.1 材料与试剂第46-47页
        2.2.2 实验仪器第47页
        2.2.3 相关试剂的配制第47-48页
    2.3 实验方法第48-50页
        2.3.1 软骨细胞传代培养、冻存、复苏第48页
        2.3.2 软骨细胞的处理第48-49页
        2.3.3 软骨细胞RNA提取、qPCR第49页
        2.3.4 软骨细胞蛋白提取、Western Blot第49页
        2.3.5 软骨细胞免疫荧光第49页
        2.3.6 RNA测序和数据分析第49-50页
    2.4 实验结果第50-59页
        2.4.1 吉非替尼抑制TGF-α对EGFR的激活第50-53页
        2.4.2 吉非替尼在转录组水平上抑制EGFR激活的效应第53-55页
        2.4.3 EGFR激活与抑制对软骨基质合成与分解有影响第55-57页
        2.4.4 EGFR的激活可抑制软骨基质合成,促进基质降解第57-59页
    2.5 讨论第59-60页
第三章 EGFR抑制剂治疗小鼠骨关节炎第60-71页
    3.1 引言第60-61页
    3.2 实验试剂与仪器第61-64页
        3.2.1 材料和试剂第61-62页
        3.2.2 实验仪器第62-63页
        3.2.3 相关试剂的配制第63-64页
    3.3 实验方法第64-66页
        3.3.1 小鼠内侧半月板切除术第64页
        3.3.2 吉非替尼壳聚糖微球的制作第64页
        3.3.3 壳聚糖微球扫描电镜样品准备第64-65页
        3.3.4 壳聚糖微球缓释效率检测第65页
        3.3.5 小鼠口服给药(管饲)第65页
        3.3.6 小鼠关节腔注射局部给药第65页
        3.3.7 组织包埋与切片、切片脱蜡、番红O/Fast Green染色第65-66页
        3.3.8 OARSI组织学评分第66页
        3.3.9 免疫组织化学第66页
        3.3.10 计数与统计第66页
    3.4 实验结果第66-69页
        3.4.1 口服吉非替尼延缓骨关节炎进展第66-67页
        3.4.2 含吉非替尼的壳聚糖微球制作第67-68页
        3.4.3 关节腔局部给药有效减轻不良反应第68-69页
    3.5 讨论第69-71页
第四章 EGFR调控骨关节炎的机制研究第71-97页
    4.1 引言第71-72页
    4.2 实验试剂与仪器第72-77页
        4.2.1 材料和试剂第72-75页
        4.2.2 实验仪器第75-76页
        4.2.3 相关试剂的配制第76-77页
    4.3 实验方法第77-83页
        4.3.1 小鼠软骨细胞的处理第77页
        4.3.2 感受态细胞的制备第77-78页
        4.3.3 慢病毒包装相关质粒转化第78页
        4.3.4 慢病毒包装相关质粒大量抽提第78-79页
        4.3.5 慢病毒包装第79-80页
        4.3.6 慢病毒感染第80页
        4.3.7 RNA提取、qPCR第80页
        4.3.8 蛋白提取、Western Blot第80页
        4.3.9 细胞免疫荧光第80-81页
        4.3.10 染色质免疫共沉淀及测序(ChIP-Seq)第81-82页
        4.3.11 数据分析第82页
        4.3.12 小鼠软骨外植体培养第82页
        4.3.13 小鼠内侧半月板切除术第82页
        4.3.14 小鼠关节腔注射局部给药第82页
        4.3.15 组织包埋与切片、切片脱蜡与番红O/Fast Green染色第82页
        4.3.16 OARSI组织学评分第82-83页
        4.3.17 免疫组织化学第83页
        4.3.18 计数与统计第83页
    4.4 实验结果第83-94页
        4.4.1 EGFR并非通过激活单一通路调控软骨细胞表型第83-85页
        4.4.2 EGFR并非通过抑制单一通路调控软骨细胞表型第85-87页
        4.4.3 染色质免疫共沉淀后测序发现自噬改变第87-89页
        4.4.4 EGFR和吉非替尼通过自噬调控软骨表型第89-92页
        4.4.5 吉非替尼通过激活自噬延缓骨关节炎进展第92-94页
    4.5 讨论第94-97页
第五章 骨关节患者EGFR激活情况及调控机制研究第97-109页
    5.1 引言第97页
    5.2 实验试剂与仪器第97-100页
        5.2.1 材料和试剂第97-99页
        5.2.2 实验仪器第99页
        5.2.3 相关试剂的配制第99-100页
    5.3 实验方法第100-102页
        5.3.1 骨关节炎患者K-L评分第100页
        5.3.2 组织包埋与切片第100页
        5.3.3 切片脱蜡与番红O/Fast Green染色第100页
        5.3.4 免疫组织化学第100-101页
        5.3.5 组织免疫荧光第101页
        5.3.6 人原代软骨细胞培养第101-102页
        5.3.7 人软骨细胞的处理第102页
        5.3.8 siRNA转染人软骨细胞第102页
        5.3.9 人软骨细胞RNA提取、qPCR第102页
    5.4 实验结果第102-107页
        5.4.1 骨关节炎患者软骨样本收集和确认第102-104页
        5.4.2 不同患者的EGFR激活情况不同第104-105页
        5.4.3 高表达pEGFR的患者亚群自噬水平受到抑制第105-106页
        5.4.4 EGFR调控人软骨细胞基因表达第106-107页
    5.5 讨论第107-109页
总结第109-110页
局限与展望第110-112页
参考文献第112-119页
综述第119-137页
    参考文献第127-137页
作者简历第137-138页

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