| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-34页 |
| 1.1 研究背景、目的和意义 | 第14页 |
| 1.1.1 研究背景 | 第14页 |
| 1.1.2 研究目的 | 第14页 |
| 1.2 肺癌药物市场分析 | 第14-20页 |
| 1.2.1 肺癌流行病学调查 | 第14-18页 |
| 1.2.2 抗肺癌药物市场研究 | 第18-20页 |
| 1.3 中药抗肿瘤研究机制进展 | 第20-22页 |
| 1.4 药效物质基础研究新思路 | 第22-25页 |
| 1.4.1 中药复方物质基础研究现状 | 第22页 |
| 1.4.2 中药物质基础研究新思路 | 第22-25页 |
| 1.5 基于组分结构和多维质控中药二次开发研究策略 | 第25-34页 |
| 1.5.1 中药二次开发研究现状 | 第25-26页 |
| 1.5.2 基于组分结构理论的中药二次开发组方研究思路 | 第26-29页 |
| 1.5.3 基于多维质控的中药二次开发产业提升思路 | 第29-34页 |
| 第二章 金复康抗肺癌药物筛选及优化 | 第34-42页 |
| 2.1 仪器及试剂 | 第34-35页 |
| 2.2 实验方法 | 第35-36页 |
| 2.3 金复康拆方研究 | 第36-37页 |
| 2.3.1 实验结果 | 第36-37页 |
| 2.3.2 本节小结 | 第37页 |
| 2.4 抗肺癌药物筛选及优化研究 | 第37-40页 |
| 2.4.1 实验结果 | 第37-40页 |
| 2.4.2 本节小结 | 第40页 |
| 2.5 本章小结 | 第40-42页 |
| 第三章 黄芪抗肺癌物质基础细胞膜固相化研究 | 第42-51页 |
| 3.1 仪器及试剂 | 第42页 |
| 3.2 细胞固相筛选体系的构建 | 第42-43页 |
| 3.2.1 细胞培养与固相化 | 第42-43页 |
| 3.2.2 样品处理 | 第43页 |
| 3.2.3 色谱条件 | 第43页 |
| 3.2.4 质谱条件 | 第43页 |
| 3.3 不同浓度黄芪对固相成分的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.1 结果与讨论 | 第43-44页 |
| 3.4 不同时间对固相成分的影响 | 第44-45页 |
| 3.4.1 结果与讨论 | 第44-45页 |
| 3.5 细胞膜固相黄芪产物检测 | 第45-50页 |
| 3.5.1 孵育液中化学成分识别 | 第45-47页 |
| 3.5.2 细胞膜固相化活性成分鉴定结果 | 第47-50页 |
| 3.6 本章小结 | 第50-51页 |
| 第四章 黄芪皂苷抑制肺癌细胞侵袭转移研究 | 第51-68页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第51-52页 |
| 4.1.1 仪器 | 第51页 |
| 4.1.2 试剂及耗材 | 第51-52页 |
| 4.1.3 溶液配制 | 第52页 |
| 4.2 黄芪甲苷对A549细胞增殖的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.1 MTT法测定黄芪甲苷对A549细胞增殖率的影响 | 第52页 |
| 4.2.2 结果与讨论 | 第52-53页 |
| 4.2.3 本节小结 | 第53页 |
| 4.3 黄芪甲苷对A549细胞粘附的影响 | 第53-54页 |
| 4.3.1 实验方法 | 第53页 |
| 4.3.2 结果与讨论 | 第53-54页 |
| 4.3.3 本节小结 | 第54页 |
| 4.4 黄芪甲苷对A549细胞迁移的影响 | 第54-56页 |
| 4.4.1 划痕试验 | 第54页 |
| 4.4.2 Transwell迁移实验 | 第54-55页 |
| 4.4.3 结果与讨论 | 第55-56页 |
| 4.4.4 本节小结 | 第56页 |
| 4.5 黄芪甲苷对A549细胞侵袭的影响 | 第56-58页 |
| 4.5.1 实验方法 | 第56-57页 |
| 4.5.2 结果与讨论 | 第57-58页 |
| 4.5.3 本节小结 | 第58页 |
| 4.6 黄芪甲苷对A549炎症因子的影响 | 第58-59页 |
| 4.6.1 实验方法 | 第58页 |
| 4.6.2 结果与讨论 | 第58-59页 |
| 4.6.3 本节小结 | 第59页 |
| 4.7 黄芪甲苷对A549细胞粘附因子的影响 | 第59-61页 |
| 4.7.1 Western blot检测MMP-2,MMP-9,E-cad,Integrin β1蛋白表达 | 第59页 |
| 4.7.2 结果与讨论 | 第59-60页 |
| 4.7.3 本节小结 | 第60-61页 |
| 4.8 黄芪甲苷对PKC-ERK1/2-NF-κB信号蛋白的影响 | 第61-63页 |
| 4.8.1 Western blot检测PKC-α,p-ERK1/2,ERK1/2,NF-κB蛋白表达 | 第61页 |
| 4.8.2 结果与讨论 | 第61-62页 |
| 4.8.3 本节小结 | 第62-63页 |
| 4.9 信号通路抑制剂对黄芪作用于A549细胞的影响 | 第63-66页 |
| 4.9.1 PKC-α,p-ERK1/2,ERK1/2,NF-κB抑制剂对黄芪甲苷抑制信号通路的影响 | 第63页 |
| 4.9.2 Transwell 检测 PKC-a, P-ERK1/2, ERK1/2, NF-kB 抑制剂对黄茂甲巧抑制 A549细胞侵袭的影响 | 第63页 |
| 4.9.3 结果与讨论 | 第63-66页 |
| 4.9.4 本节小结 | 第66页 |
| 4.10 本章小结 | 第66-68页 |
| 第五章 黄芪黄酮抑制肺癌细胞侵袭转移研究 | 第68-86页 |
| 5.1 仪器及试剂 | 第68-69页 |
| 5.1.1 仪器 | 第68-69页 |
| 5.1.2 试剂及耗材 | 第69页 |
| 5.1.3 溶液配制 | 第69页 |
| 5.2 毛蕊异黄酮对A549细胞增殖的影响 | 第69-70页 |
| 5.2.1 实验方法 | 第69页 |
| 5.2.2 结果与讨论 | 第69-70页 |
| 5.2.3 本节小结 | 第70页 |
| 5.3 毛蕊异黄酮对A549细胞凋亡的影响 | 第70-72页 |
| 5.3.1 流式细胞仪测定毛蕊异黄酮诱导的A549细胞凋亡 | 第70页 |
| 5.3.2 结果与讨论 | 第70-71页 |
| 5.3.3 本节小结 | 第71-72页 |
| 5.4 毛蕊异黄酮对A549细胞粘附的影响 | 第72-73页 |
| 5.4.1 实验方法 | 第72页 |
| 5.4.2 统计学分析 | 第72页 |
| 5.4.3 结果与讨论 | 第72-73页 |
| 5.4.4 本节小结 | 第73页 |
| 5.5 毛蕊异黄酮对A549细胞迁移的影响 | 第73-75页 |
| 5.5.1 划痕试验 | 第73页 |
| 5.5.2 Transwell迁移实验 | 第73-74页 |
| 5.5.3 结果与讨论 | 第74-75页 |
| 5.5.4 本节小结 | 第75页 |
| 5.6 毛蕊异黄酮对A549细胞侵袭的影响 | 第75-76页 |
| 5.6.1 Transwell侵袭实验 | 第75页 |
| 5.6.2 结果与讨论 | 第75-76页 |
| 5.6.3 本节小结 | 第76页 |
| 5.7 毛蕊异黄酮对A549细胞粘附因子的影响 | 第76-79页 |
| 5.7.1 Western blot检测MMP-2,MMP-9,E-cad,Integrin β1蛋白表达 | 第76页 |
| 5.7.2 结果与讨论 | 第76-79页 |
| 5.7.3 本节小结 | 第79页 |
| 5.8 毛蕊异黄酮对PKC-ERK1/2信号蛋白的影响 | 第79-81页 |
| 5.8.1 Western blot检测PKC-α,p-ERK1/2,ERK1/2,NF-κB蛋白表达 | 第79页 |
| 5.8.2 结果与讨论 | 第79-80页 |
| 5.8.3 本节小结 | 第80-81页 |
| 5.9 信号通路抑制剂对黄芪作用于A549细胞的影响 | 第81-84页 |
| 5.9.1 PKC-α,p-ERK1/2,ERK1/2抑制剂对毛蕊异黄酮抑制信号通路的影响 | 第81页 |
| 5.9.2 Transwell检测PKC-0, P-ERK1/2, ERK1/2抑制剂对毛蕊异黄爾抑制A549细胞侵袭的影响 | 第81页 |
| 5.9.3 结果与讨论 | 第81-84页 |
| 5.9.4 本节小结 | 第84页 |
| 5.10 本章小结 | 第84-86页 |
| 第六章 黄芪活性成分体内代谢研究 | 第86-100页 |
| 6.1 仪器及试剂 | 第86-87页 |
| 6.2 实验方法 | 第87-88页 |
| 6.2.1 样品收集 | 第87页 |
| 6.2.2 样品制备 | 第87-88页 |
| 6.2.3 色谱及质谱条件 | 第88页 |
| 6.3 统计学分析 | 第88页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第88-99页 |
| 6.4.1 离子模式的选择 | 第88-89页 |
| 6.4.2 代谢产物识别 | 第89-93页 |
| 6.4.3 代谢物鉴定 | 第93-99页 |
| 6.5 本章小结 | 第99-100页 |
| 第七章 提高黄芪活性成分抗肿瘤效果制剂学研究 | 第100-111页 |
| 7.1 仪器及试剂 | 第100-101页 |
| 7.1.1 仪器 | 第100-101页 |
| 7.1.2 试剂 | 第101页 |
| 7.1.3 动物 | 第101页 |
| 7.1.4 细胞培养 | 第101页 |
| 7.2 实验方法 | 第101-103页 |
| 7.2.1 毛蕊异黄酮纳米胶束的制备 | 第101-102页 |
| 7.2.2 粒径,多分散性,和Zeta电位 | 第102页 |
| 7.2.3 形态特征 | 第102页 |
| 7.2.4 包封率的测定 | 第102页 |
| 7.2.5 体外释药 | 第102页 |
| 7.2.6 肿瘤靶向评估 | 第102-103页 |
| 7.2.7 细胞摄取实验 | 第103页 |
| 7.2.8 细胞存活实验 | 第103页 |
| 7.2.9 体内抗肿瘤功效 | 第103页 |
| 7.2.10 统计学分析 | 第103页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第103-109页 |
| 7.3.1 处方设计 | 第104页 |
| 7.3.2 毛蕊异黄酮纳米胶束制备和表征 | 第104-105页 |
| 7.3.3 药物包封率 | 第105页 |
| 7.3.4 体外释药 | 第105-106页 |
| 7.3.6 细胞摄取 | 第106-107页 |
| 7.3.7 肿瘤靶向 | 第107页 |
| 7.3.8 细胞毒性 | 第107-108页 |
| 7.3.9 体内抗肿瘤功效 | 第108-109页 |
| 7.4 讨论 | 第109-110页 |
| 7.5 本章小结 | 第110-111页 |
| 第八章 结论与展望 | 第111-113页 |
| 8.1 研究创新点 | 第111页 |
| 8.2 主要结论 | 第111-112页 |
| 8.3 工作展望 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-125页 |
| 攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第125-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 成旭东简介 | 第127页 |
