| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-47页 |
| 1.1 荧光碳量子点概述 | 第11-12页 |
| 1.2 荧光碳量子点的光学特性 | 第12-15页 |
| 1.2.1 荧光碳量子点的吸光性能 | 第12页 |
| 1.2.2 荧光碳量子点的光致发光性能 | 第12-15页 |
| 1.2.2.1 由共轭π-区域带隙跃迁引起的荧光发射 | 第12-13页 |
| 1.2.2.2 碳量子点表面缺陷导致的荧光发射 | 第13页 |
| 1.2.2.3 碳量子点的荧光发射波长的可控调节 | 第13-14页 |
| 1.2.2.4 上转换荧光 | 第14-15页 |
| 1.3 荧光碳量子点的制备路径 | 第15-19页 |
| 1.3.1 自上而下路径 | 第15-16页 |
| 1.3.2 自下而上路径 | 第16-18页 |
| 1.3.3 碳量子点的表面钝化和功能化 | 第18-19页 |
| 1.4 碳量子点的应用 | 第19-22页 |
| 1.4.1 化学传感 | 第19-20页 |
| 1.4.2 生物传感 | 第20-21页 |
| 1.4.3 生物成像 | 第21-22页 |
| 1.5 金属纳米簇概述 | 第22-23页 |
| 1.6 金属纳米簇的制备方法 | 第23-29页 |
| 1.6.1 聚合物模板合成法 | 第24-25页 |
| 1.6.2 巯基小分子化合物合成法 | 第25-28页 |
| 1.6.3 蛋白质和多肽模板合成法 | 第28页 |
| 1.6.4 DNA模板合成法 | 第28-29页 |
| 1.7 银纳米簇的光学性质 | 第29-31页 |
| 1.7.1 银纳米簇的吸光性质 | 第30页 |
| 1.7.2 银纳米簇的光致发光性质 | 第30-31页 |
| 1.8 银纳米簇的应用 | 第31-37页 |
| 1.8.1 金属离子的检测 | 第31-32页 |
| 1.8.2 生物传感 | 第32-34页 |
| 1.8.3 生物标记和成像 | 第34-37页 |
| 1.9 本论文设计思路 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-47页 |
| 第二章 基于β—环糊精修饰的碳量子点的荧光方法检测碱性磷酸酶活性 | 第47-70页 |
| 2.1 前言 | 第47-49页 |
| 2.2 实验部分 | 第49-53页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第49页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第49-50页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第50-53页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第53-63页 |
| 2.3.1 基于β-CD-CQDs纳米探针检测碱性磷酸酶活性的原理 | 第53-55页 |
| 2.3.2 β-CD-CQDs纳米探针的合成与表征 | 第55-57页 |
| 2.3.3 β-CD-CQDs和p-硝基苯酚之间的光诱导电子转移机制 | 第57-59页 |
| 2.3.4 荧光法实时检测碱性磷酸酶(ALP)活性 | 第59-63页 |
| 2.4 结论 | 第63-65页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
| 第三章 基于功能化的碳量子点开发的一种用于检测糖苷酶活性的通用的荧光策略:实现在体外和细胞内测定β-半乳糖苷酶活性 | 第70-91页 |
| 3.1 前言 | 第70-71页 |
| 3.2 实验部分 | 第71-75页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第71-72页 |
| 3.2.2 实验试剂 | 第72-73页 |
| 3.2.3 实验过程 | 第73-75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-86页 |
| 3.3.1 基于单-6-氨基-β-环糊精修饰的碳点即(β-CD-CQDs纳米探针)检测糖苷酶的原理 | 第75-76页 |
| 3.3.2 单-6-氨基-β-环糊精修饰的碳点即的合成与表征 | 第76-77页 |
| 3.3.3 基于单-6-氨基-β-环糊精修饰碳点检测β—半乳糖苷酶的策略 | 第77-80页 |
| 3.3.4 荧光法检测β-半乳糖苷酶活性 | 第80-84页 |
| 3.3.5 β-半乳糖苷酶的抑制剂筛选 | 第84页 |
| 3.3.6 β-半乳糖苷酶的细胞成像 | 第84-86页 |
| 3.4 结论 | 第86-87页 |
| 参考文献 | 第87-91页 |
| 第四章 基于超分子自组装原理开发的一种实时测定α-葡萄糖苷酶活性以及筛选抑制剂的荧光方法 | 第91-110页 |
| 4.1 前言 | 第91-92页 |
| 4.2 实验部分 | 第92-96页 |
| 4.2.1 实验试剂 | 第92-93页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第93-96页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第96-105页 |
| 4.3.1 基于单-6-乙二胺-β-环糊精功能化的碳点检测α-葡萄糖苷酶的原理 | 第96-98页 |
| 4.3.2 单-6-乙二胺-β-环糊精功能化碳点(β-CD-CQDs)的合成与表征 | 第98-102页 |
| 4.3.3 基于单-6-乙二胺-β-环糊精功能化的碳点的荧光法检测α-葡萄糖苷酶活性 | 第102-104页 |
| 4.3.4 α-葡萄糖苷酶抑制剂筛选 | 第104-105页 |
| 4.5 结论 | 第105-106页 |
| 参考文献 | 第106-110页 |
| 第五章 基于银纳米簇的聚集诱导发光增强性能开发的纳米荧光开关及其用于实时测定焦磷酸酶活性 | 第110-133页 |
| 5.1 前言 | 第110-111页 |
| 5.2 实验部分 | 第111-115页 |
| 5.2.1 实验仪器 | 第111-112页 |
| 5.2.2 实验试剂 | 第112页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第112-115页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第115-128页 |
| 5.3.1 银纳米簇的合成与表征 | 第115-118页 |
| 5.3.2 基于银纳米簇的AIEE效应的多刺激响应纳米开关 | 第118-123页 |
| 5.3.3 基于离子激发的AgNCs纳米开关用于测定焦磷酸酶活性 | 第123-127页 |
| 5.3.4 焦磷酸酶抑制剂实验 | 第127-128页 |
| 5.4 结论 | 第128-129页 |
| 参考文献 | 第129-133页 |
| 第六章 本文研究结论与展望 | 第133-134页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第134-135页 |
| 致谢 | 第135-137页 |
