| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 绪论 | 第10-21页 |
| 1.1 引言 | 第10-12页 |
| 1.1.1 胶原蛋白 | 第10-11页 |
| 1.1.2 胶原蛋白在医药工业中的应用 | 第11-12页 |
| 1.2 胶原蛋白提取方法 | 第12-13页 |
| 1.2.1 热水提取法 | 第12页 |
| 1.2.2 酸提取法 | 第12页 |
| 1.2.3 碱提取法 | 第12页 |
| 1.2.4 酶提取法 | 第12-13页 |
| 1.2.5 中性盐提取法 | 第13页 |
| 1.3 水产品胶原蛋白的性质 | 第13-14页 |
| 1.3.1 胶原蛋白的热稳定性 | 第13页 |
| 1.3.2 胶原蛋白的溶解性 | 第13-14页 |
| 1.3.3 胶原蛋白的乳化性 | 第14页 |
| 1.3.4 胶原蛋白的凝胶特性 | 第14页 |
| 1.4 BP神经网络 | 第14-16页 |
| 1.4.1 BP神经网络原理及方法 | 第14-15页 |
| 1.4.2 BP神经网络与正交实验结合依据 | 第15页 |
| 1.4.3 BP神经网络参数 | 第15-16页 |
| 1.5 壳聚糖及药物缓释 | 第16-17页 |
| 1.6 交联剂 | 第17-18页 |
| 1.6.1 戊二醛 | 第17页 |
| 1.6.2 三偏磷酸钠 | 第17-18页 |
| 1.7 裸花紫株 | 第18-19页 |
| 1.7.1 裸花紫株活性成分 | 第18页 |
| 1.7.2 裸花紫株药理作用 | 第18页 |
| 1.7.3 裸花紫株临床研究 | 第18-19页 |
| 1.8 胶原蛋白/壳聚糖基生物材料研究进展 | 第19-20页 |
| 1.9 课题研究意义、内容及创新性 | 第20-21页 |
| 1.9.1 本课题研究意义 | 第20页 |
| 1.9.2 具体研究内容 | 第20页 |
| 1.9.3 本课题的创新性 | 第20-21页 |
| 2 胶原蛋白的提取及工艺优化 | 第21-33页 |
| 2.1、引言 | 第21页 |
| 2.2 实验药品与方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 原料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.2 海南罗非鱼鱼皮原料及成分测定 | 第22页 |
| 2.2.3 层次模型图构建 | 第22-23页 |
| 2.2.4 鱼皮胶原蛋白的提取 | 第23页 |
| 2.2.5 胶原蛋白含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.6 正交实验设计 | 第24页 |
| 2.2.7 胶原蛋白傅里叶变换红外光谱(FTIR)分析 | 第24页 |
| 2.2.8 胶原蛋白紫外扫描(UV spectra) | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2.3.1 鱼皮组成成分 | 第24-25页 |
| 2.3.2 层次分析法鱼皮前处理结果 | 第25页 |
| 2.3.3 鱼皮胶原蛋白提取单因素实验 | 第25-26页 |
| 2.3.4 正交实验结果 | 第26-28页 |
| 2.3.5 BP神经网络建立和胶原蛋白提取率预测 | 第28-29页 |
| 2.3.6 胶原蛋白样品 | 第29-30页 |
| 2.3.7 胶原蛋白红外分析 | 第30-31页 |
| 2.3.8 胶原蛋白紫外分析 | 第31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-33页 |
| 3 胶原蛋白/壳聚糖复合微球制备 | 第33-46页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 实验药品与方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 原料与仪器 | 第33-34页 |
| 3.2.2 负载水溶性药物复合微球制备 | 第34页 |
| 3.2.3 负载脂溶性药物复合微球制备 | 第34页 |
| 3.2.4 激光粒度仪 | 第34页 |
| 3.2.5 红外光谱(FT-IR) | 第34页 |
| 3.2.6 扫描电镜(SEM) | 第34-35页 |
| 3.2.7 包封率和载药率 | 第35页 |
| 3.2.8 标准曲线绘制 | 第35页 |
| 3.2.9 体外释放模拟实验 | 第35页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第35-45页 |
| 3.3.1 油水比的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.2 转速的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.3 交联剂的影响 | 第38-40页 |
| 3.3.4 纳米SiO_2浓度的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 MS的影响 | 第41-43页 |
| 3.3.6 FT-IR分析 | 第43页 |
| 3.3.7 包封率和载药率 | 第43-44页 |
| 3.3.8 标准曲线方程 | 第44页 |
| 3.3.9 纳米SiO_2对盐酸小檗碱载药微球释放的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.10 纳米SiO_2对维生素D载药微球释放的影响 | 第45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 4 胶原蛋白/壳聚糖载药生物膜的制备 | 第46-52页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 实验药品与方法 | 第46-48页 |
| 4.2.1 原料与仪器 | 第46-47页 |
| 4.2.2 载药生物膜制备 | 第47页 |
| 4.2.3 红外光谱(FT-IR) | 第47页 |
| 4.2.4 扫描电镜(SEM) | 第47页 |
| 4.2.5 吸水率的测量 | 第47页 |
| 4.2.6 生物膜的降解 | 第47页 |
| 4.2.7 标准曲线绘制 | 第47页 |
| 4.2.8 体外释放模拟实验 | 第47-48页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第48-51页 |
| 4.3.1 FT-IR分析 | 第48-49页 |
| 4.3.2 SEM分析 | 第49页 |
| 4.3.3 吸水率分析 | 第49-50页 |
| 4.3.4 降解分析 | 第50-51页 |
| 4.3.5 体外药物缓释测试 | 第51页 |
| 4.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 讨论 | 第52-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 附录：硕士期间的科研成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
