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利用转基因小鼠细胞重组靶向筛选体系进行云南特色天然抗肿瘤抗衰老化合物的筛选

摘要第6-8页
Abstract第8-9页
缩略词第17-18页
第一章 前言第18-31页
    1 抗肿瘤研究现状第18-24页
        1.1 肿瘤发生相关机制研究第18-19页
        1.2 抗肿瘤治疗现状第19-24页
            1.2.1 抗肿瘤相关化疗药物第19-22页
                奥沙利铂第19页
                异长春花碱第19页
                紫杉醇第19-20页
                多西他赛第20页
                吉西他滨第20页
                卡培他滨第20页
                利妥昔单抗第20页
                羟基喜树碱第20-21页
                多柔比星第21页
                吡柔比星第21页
                表柔比星第21-22页
            1.2.2 抗肿瘤中药研究第22-24页
                人参皂苷与人参多糖第22页
                薏苡酯第22页
                通关藤第22页
                鸦胆子油酸第22-23页
                黄芪第23页
                莪术第23-24页
    2 抗衰老相关研究现状第24-28页
        2.1 衰老发生的原因第24页
        2.2 抗衰老药物研究第24-28页
            2.2.1 抗氧化剂第24-25页
            2.2.2 维生素类第25-26页
            2.2.3 还原酶类与微量元素第26页
            2.2.4 营养素类第26页
            2.2.5 单胺氧化酶抑制剂第26页
            2.2.6 免疫调节剂第26-27页
            2.2.7 抗衰老激素第27页
            2.2.8 抗衰延寿相关中药第27-28页
                人参第27页
                丹参第27页
                黄芪第27页
                银杏第27-28页
                刺五加第28页
                五味子第28页
                马齿苋第28页
                枸杞子第28页
    3 端粒学说第28-29页
        3.1 端粒与抗衰相关研究进展第28-29页
        3.2 端粒酶逆转录酶(TERT)研究现状和意义第29页
    4 关于抗衰老与抗肿瘤立题意义第29-31页
第二章 实验材料第31-35页
    2.1 DMEM培养基的配制第31页
    2.2 PBS (1×)的配制第31页
    2.3 胰酶(0.2%)的配制第31-32页
    2.4 细胞冻存液的配制第32页
    2.5 细胞裂解液的配制第32页
    2.6 考马斯亮蓝R-250第32-33页
    2.7 SDS-PAGE电泳凝胶各组分配制第33页
    2.8 SDS-PAGE Buffer (SDS-free)10×缓冲液的配制第33-34页
    2.9 电泳缓冲液和转膜液的配制第34页
    2.10 封闭液的配制第34页
    2.11 洗膜液的配制第34-35页
第三章 实验方法第35-46页
    3.1 荧光报告载体的构建第35-36页
    3.2 细胞培养第36-37页
        3.2.1 复苏细胞第36页
        3.2.2 细胞传代第36-37页
        3.2.3 细胞冻存第37页
    3.3 启动子细胞荧光筛药第37-38页
    3.4 细胞RNA提取第38-39页
    3.5 MTT与SRB实验第39-40页
        3.5.1 MTT实验原理第39页
        3.5.2 MTT实验步骤第39页
        3.5.3 SRB实验原理第39-40页
        3.5.4 SRB实验步骤第40页
    3.6 蛋白质免疫印迹实验第40-43页
        3.6.1 样品处理第40页
        3.6.2 蛋白质浓度标准曲线的绘制(考马斯亮蓝法)第40-41页
        3.6.3 蛋白样品浓度的测定第41页
        3.6.4 配胶第41-42页
        3.6.5 蛋白凝胶电泳第42页
        3.6.6 转膜第42页
        3.6.7 封闭第42页
        3.6.8 一抗孵育第42页
        3.6.9 二抗孵育第42-43页
        3.6.10 显影第43页
    3.7 流式细胞仪检测ROS水平第43-44页
        3.7.1 实验原理第43页
        3.7.2 细胞加药第43页
        3.7.3 装载探针第43-44页
        3.7.4 设定流式细胞仪,上机检测。第44页
    3.8 细胞划痕实验第44-46页
        3.8.1 细胞铺板第44页
        3.8.2 模拟伤口第44页
        3.8.3 细胞加药第44-45页
        3.8.4 数据处理第45-46页
第四章 实验仪器第46-47页
第五章 实验结论第47-65页
    5.1 农科院A、B组200种天然植物提取物的启动子荧光筛选第47-51页
    5.2 MTT实验与SRB实验第51-54页
    5.3 Western-Blot进一步筛选A组和B组药物对启动子的激活情况第54-56页
    5.4 RT-PCR检测药物对细胞TERT活性的影响第56页
    5.5 B90号药物(十字崖爬藤)具有抗肿瘤活性第56-62页
        5.5.1 十字崖爬藤能同时激活wt细胞的p53和p19第56-57页
        5.5.2 十字崖爬藤相对明显地抑制结肠癌和肝癌细胞的生长第57-62页
    5.6 基于启动子筛选平台对C组200种中药提取物进行筛选第62-65页
        5.6.1 启动子细胞的荧光初筛第62页
        5.6.2 对部分通过初筛的药物进行蛋白质免疫印迹验证第62-65页
第六章 讨论第65-68页
第七章 致谢第68-70页
第八章 参考文献第70-75页
附录A A组104种云南特色天然化合物提取来源信息第75-79页
附录B B组96种云南特色天然化合物提取来源信息第79-83页
附录C C组200种药典来源的天然提取物来源信息第83-91页
附录D 硕士期间发表文章第91页

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