| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词表 | 第11-12页 |
| 前言 | 第12-14页 |
| 1 材料与方法 | 第14-30页 |
| 1.1 实验仪器 | 第14-15页 |
| 1.2 实验用品 | 第15-16页 |
| 1.3 主要试剂的配制 | 第16-20页 |
| 1.4 实验方法 | 第20-30页 |
| 1.4.1 细胞培养 | 第20-21页 |
| 1.4.2 RNA的提取 | 第21-22页 |
| 1.4.3 质粒的构建 | 第22-25页 |
| 1.4.4 双荧光素酶报告实验 | 第25-26页 |
| 1.4.5 实时荧光定量PCR | 第26页 |
| 1.4.6 染色质免疫共沉淀（ChIP） | 第26-27页 |
| 1.4.7 免疫荧光 | 第27-28页 |
| 1.4.8 免疫印迹 | 第28-30页 |
| 2 实验结果 | 第30-42页 |
| 2.1 通过转录组测序技术在敲除和过表达Hsf4的细胞系中筛选新的下游靶基因 | 第30-32页 |
| 2.2 通过实时荧光定量PCR验证转录组数据中差异表达的基因 | 第32-33页 |
| 2.3 Hsf4通过直接结合在Aim-1的启动子上促进其转录表达 | 第33-35页 |
| 2.4 Aim-1的表达不受热休克刺激的调控 | 第35-36页 |
| 2.5 敲低Aim-1导致Hsf4下游基因alphaB-crystallin的表达下降 | 第36-37页 |
| 2.6 Aim-1不同截短体在细胞内呈现不同的亚定位方式 | 第37-38页 |
| 2.7 制备的Aim-1多克隆抗体可以正确的识别Aim-1蛋白 | 第38-39页 |
| 2.8 Aim-1主要在成年小鼠晶状体上皮细胞中表达 | 第39-41页 |
| 2.9 Aim-1a在敲除Hsf4的斑马鱼中表达量下降 | 第41-42页 |
| 3 讨论 | 第42-44页 |
| 结论 | 第44-46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 综述 | 第48-58页 |
| 参考文献 | 第54-58页 |
| 致谢 | 第58-60页 |
| 在读期间参加的学术活动及研究成果 | 第60-61页 |
