| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第10-26页 |
| 1.1 白水及白水循环 | 第10-16页 |
| 1.1.1 造纸白水回用的意义 | 第10-11页 |
| 1.1.2 造纸白水循环回用的途径 | 第11页 |
| 1.1.3 白水的处理方式 | 第11-13页 |
| 1.1.4 酶工程在造纸工业的应用 | 第13-16页 |
| 1.2 固化酶 | 第16-23页 |
| 1.2.1 固化酶的载体—壳聚糖 | 第16-18页 |
| 1.2.2 固化酶的交联剂—戊二醛 | 第18-19页 |
| 1.2.3 固化酶的概述 | 第19-20页 |
| 1.2.4 固化酶的制备方法 | 第20-21页 |
| 1.2.5 影响酶催化作用的因素 | 第21-23页 |
| 1.3 研究的内容、技术路线和目的意义 | 第23-26页 |
| 1.3.1 本实验研究内容 | 第23页 |
| 1.3.2 本实验技术路线 | 第23页 |
| 1.3.3 本实验研究的目的及意义 | 第23-26页 |
| 2 酶的固化工艺优化 | 第26-40页 |
| 2.1 引言 | 第26-27页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.1 实验原料 | 第27页 |
| 2.2.2 实验药品 | 第27页 |
| 2.2.3 实验主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.3.1 实验试剂准备 | 第28-29页 |
| 2.3.2 游离酶在壳聚糖微球上固化 | 第29-30页 |
| 2.3.3 固化果胶酶，固化木聚糖酶酶活的测定 | 第30-31页 |
| 2.3.4 固化脂肪酶酶活的测定 | 第31页 |
| 2.3.5 固化酶稳定性的测定 | 第31-32页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第32-39页 |
| 2.4.0 酶活测定标准曲线 | 第32页 |
| 2.4.1 果胶酶活力的测定 | 第32-34页 |
| 2.4.2 木聚糖酶活力的测定 | 第34-36页 |
| 2.4.3 脂肪酶活力的测定 | 第36-38页 |
| 2.4.4 酶活稳定性的检测 | 第38-39页 |
| 2.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 3 固化酶处理白水效果 | 第40-50页 |
| 3.1 引言 | 第40页 |
| 3.2 实验原料和实验仪器 | 第40-41页 |
| 3.2.1 实验原料 | 第40-41页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-42页 |
| 3.3.1 DCS水样的制备 | 第41页 |
| 3.3.2 固化酶处理对DCS水样性质的影响 | 第41-42页 |
| 3.3.3 固化酶处理前后活力的变化 | 第42页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第42-48页 |
| 3.4.1 固化酶酶处理DCS水样 | 第42-45页 |
| 3.4.2 固化酶处理前后活力的变化 | 第45-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 4 固化酶的复配处理白水工艺 | 第50-66页 |
| 4.1 引言 | 第50页 |
| 4.2 实验 | 第50-52页 |
| 4.2.1 实验原料 | 第50页 |
| 4.2.2 实验主要仪器 | 第50页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 4.3.1 正交试验设计 | 第52-53页 |
| 4.3.2 复配固化酶处理对DCS水样性质的影响 | 第53-55页 |
| 4.3.3 复配固化酶处理DCS水样GC-MS分析 | 第55-64页 |
| 4.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 5 结论与展望 | 第66-68页 |
| 5.1 结论 | 第66页 |
| 5.2 本实验创新之处 | 第66-67页 |
| 5.3 展望 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 致谢 | 第72-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第74-75页 |