| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第15-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-22页 |
| 1.1 中药多糖研究概况 | 第16-19页 |
| 1.1.1 中药多糖提取方法概况 | 第16-17页 |
| 1.1.2 中药多糖活性研究概况 | 第17-18页 |
| 1.1.3 中药发酵的研究概况 | 第18-19页 |
| 1.2 树突状细胞研究概况 | 第19-20页 |
| 1.2.1 树突状细胞的来源 | 第19页 |
| 1.2.2 树突状细胞识别病原体 | 第19-20页 |
| 1.2.3 树突状细胞对T细胞的调节 | 第20页 |
| 1.2.4 树突状细胞对NK细胞的调节 | 第20页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第20-22页 |
| 第二章 发酵黄芪多糖的提取工艺优化 | 第22-30页 |
| 2.1 试验材料 | 第22页 |
| 2.1.1 FGM菌株 | 第22页 |
| 2.1.2 中药材 | 第22页 |
| 2.1.3 培养基 | 第22页 |
| 2.1.4 主要试剂与仪器 | 第22页 |
| 2.2 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.2.1 发酵黄芪粉的制备 | 第22页 |
| 2.2.2 发酵黄芪多糖粗提取 | 第22-23页 |
| 2.2.3 多糖含量测定 | 第23页 |
| 2.2.4 单因素实验 | 第23页 |
| 2.2.5 响应面法优化试验设计 | 第23页 |
| 2.3 试验结果 | 第23-28页 |
| 2.3.1 多糖的标准曲线 | 第23-24页 |
| 2.3.2 提取时间对发酵黄芪多糖的影响 | 第24页 |
| 2.3.3 提取温度对发酵黄芪多糖含量的影响 | 第24页 |
| 2.3.4 不同料液比对发酵黄芪多糖含量的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.5 Box-Benhnken设计试验结果及分析 | 第25-26页 |
| 2.3.6 影响发酵黄芪多糖含量的主要因素分析 | 第26页 |
| 2.3.7 响应面及等高线结果 | 第26-28页 |
| 2.3.8 验证试验 | 第28页 |
| 2.4 分析与讨论 | 第28-29页 |
| 2.5 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 发酵黄芪多糖的纯化及鉴定 | 第30-34页 |
| 3.1 试验材料 | 第30页 |
| 3.1.1 主要材料 | 第30页 |
| 3.1.2 主要试剂与仪器 | 第30页 |
| 3.2 试验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.1 发酵黄芪粉的制备 | 第30页 |
| 3.2.2 多糖提取 | 第30-31页 |
| 3.2.3 多糖纯化 | 第31页 |
| 3.2.4 FAPS和APS含量测定 | 第31页 |
| 3.2.5 多糖鉴定 | 第31页 |
| 3.3 试验结果 | 第31-32页 |
| 3.3.1 多糖和内毒素标准曲线 | 第31页 |
| 3.3.2 多糖得率检测结果 | 第31页 |
| 3.3.3 多糖的纯度检测结果 | 第31-32页 |
| 3.3.4 内毒素含量检测结果 | 第32页 |
| 3.4 分析与讨论 | 第32页 |
| 3.5 小结 | 第32-34页 |
| 第四章 发酵黄芪多糖对小鼠树突状细胞成熟的影响 | 第34-45页 |
| 4.1 试验材料 | 第34-35页 |
| 4.1.1 试验动物 | 第34页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第34页 |
| 4.1.3 主要仪器和设备 | 第34页 |
| 4.1.4 主要试剂配制 | 第34-35页 |
| 4.2 试验方法 | 第35-39页 |
| 4.2.1 FAPS和APS的制备 | 第35页 |
| 4.2.2 小鼠骨髓源树突状细胞的体外培养及纯化 | 第35页 |
| 4.2.3 FAPS的药物浓度选择 | 第35页 |
| 4.2.4 FAPS刺激DC成熟 | 第35-36页 |
| 4.2.5 细胞的形态观察 | 第36页 |
| 4.2.6 ELISA检测相关细胞因子 | 第36页 |
| 4.2.7 mRNA检测 | 第36-38页 |
| 4.2.8 混合淋巴细胞反应 | 第38页 |
| 4.2.9 统计学分析 | 第38-39页 |
| 4.3 试验结果 | 第39-43页 |
| 4.3.1 细胞形态观察 | 第39-40页 |
| 4.3.2 ELISA检测结果 | 第40-41页 |
| 4.3.3 mRNA检测结果 | 第41-42页 |
| 4.3.4 混合淋巴细胞反应结果 | 第42-43页 |
| 4.4 分析与讨论 | 第43-44页 |
| 4.5 小结 | 第44-45页 |
| 第五章 发酵黄芪多糖诱导树突状细胞成熟的机制研究 | 第45-51页 |
| 5.1 试验材料 | 第45-46页 |
| 5.1.1 试验动物 | 第45页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第45页 |
| 5.1.3 主要仪器和设备 | 第45页 |
| 5.1.4 主要试剂配制 | 第45-46页 |
| 5.2 试验方法 | 第46-47页 |
| 5.2.1 FAPS制备 | 第46页 |
| 5.2.2 小鼠骨髓源树突状细胞的体外培养及纯化 | 第46页 |
| 5.2.3 FAPS刺激DC成熟 | 第46页 |
| 5.2.4 相关信号通路的mRNA检测 | 第46-47页 |
| 5.2.5 相关信号通路的蛋白检测 | 第47页 |
| 5.3 实验结果 | 第47-49页 |
| 5.3.1 信号通路相关的mRNA检测结果 | 第47-49页 |
| 5.3.2 Western Blot实验结果 | 第49页 |
| 5.4 分析与讨论 | 第49-50页 |
| 5.5 小结 | 第50-51页 |
| 第六章 全文结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |