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人源CBP Bromodomain与乙酰化组蛋白H3K56的结构及功能研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-8页
第1章 CBP bromodomain识别组蛋白乙酰化修饰H3K56ac的研究背景第12-28页
    1.1 引言第12-14页
    1.2 核小体结构第14-15页
    1.3 表观遗传调控第15-16页
    1.4 组蛋白翻译后修饰第16-24页
        1.4.1 组蛋白乙酰化翻译后修饰第17-20页
        1.4.2 组蛋白去乙酰化修饰第20-21页
        1.4.3 组蛋白乙酰化修饰的识别第21-24页
    1.5 CBP蛋白的结构与功能第24-25页
    1.6 H3K56ac的重要作用第25-26页
    1.7 CBP bromodomain与H3K56ac的相互作用第26-28页
第2章 材料与方法第28-55页
    2.1 蛋白相关信息调研及获取第28页
    2.2 目的基因的克隆第28-36页
        2.2.1 蛋白质边界选择第28页
        2.2.2 引物设计第28-29页
        2.2.3 PCR扩增第29-30页
        2.2.4 PCR产物回收第30-31页
        2.2.5 目的基因片段双酶切实验第31-32页
        2.2.6 载体准备第32-33页
        2.2.7 酶切后的片段与载体连接第33页
        2.2.8 连接产物转化入感受态细胞第33-34页
        2.2.9 单克隆鉴定及测序第34-35页
        2.2.10 构建定点突变体第35-36页
    2.3 目的蛋白结构域的表达与纯化第36-44页
        2.3.1 初步少量试表达第36-38页
        2.3.2 表达目的蛋白第38页
        2.3.3 His6-Tag融合蛋白纯化策略第38-40页
        2.3.4 GST标签融合蛋白纯化策略第40-41页
        2.3.5 分子筛纯化目的蛋白第41-42页
        2.3.6 聚丙烯酰胺凝胶电泳第42-43页
        2.3.7 蛋白浓度测定第43-44页
        2.3.8 多肽样品处理第44页
    2.4 晶体生长、数据收集及结构解析第44-46页
        2.4.1 晶体生长第44-45页
        2.4.2 晶体数据收集第45页
        2.4.3 晶体数据处理及结构的修正第45-46页
    2.5 组蛋白表达及体外核小体的组装第46-50页
        2.5.1 组蛋白表达及纯化第46页
        2.5.2 HPLC精细纯化组蛋白第46-47页
        2.5.3 核小体体外重组第47-48页
        2.5.4 非天然氨基酸方法重组乙酰化组蛋白第48-50页
        2.5.5 Native电泳第50页
    2.6 核磁相关实验第50-51页
        2.6.1 核磁样品准备第50页
        2.6.2 NMR化学位移扰动实验第50-51页
    2.7 相互作用实验第51-55页
        2.7.1 GST pull-down第51-52页
        2.7.2 Western blot实验第52-53页
        2.7.3 核小体免疫共沉淀第53-54页
        2.7.4 等温滴定量热(ITC)第54-55页
第3章 人源CBP bromodomain与组蛋白H3K56ac的结构及功能研究第55-79页
    3.1 实验结果第55-75页
        3.1.1 CBP bromo结构域的克隆与表达第55-57页
        3.1.2 CBP-BD与小牛胸腺组蛋白相互作用第57-58页
        3.1.3 CBP-BD与H3K56ac(44-57)肽段的选择性验证第58-61页
        3.1.4 CBP bromodomain与H3 K56ac( 44-57)肽段的复合物晶体生长、数据收集及结构解析第61-63页
        3.1.5 CBP bromodomain与H3K56ac( 44-57)复合物晶体结构的分析第63-70页
        3.1.6 体外重组H3K56ac的组蛋白与CBP bromodomain的相互作用第70-75页
    3.2 实验结论第75页
    3.3 实验讨论第75-79页
参考文献第79-85页
致谢第85-86页
研究生期间待发表的学术论文及参加的学术会议第86页

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