| 致谢 | 第6-7页 |
| 搞要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第1章 绪论 | 第13-30页 |
| 1.1 研究背景 | 第13-14页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第14-28页 |
| 1.2.1 微生物吸附难生化有机污染物 | 第14-16页 |
| 1.2.2 微生物降解难生化有机污染物 | 第16-19页 |
| 1.2.3 胞外聚合物去除废水中污染物的机理探讨 | 第19-28页 |
| 1.3 存在的问题和研究思路 | 第28页 |
| 1.4 研究内容与技术路线 | 第28-30页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第28-29页 |
| 1.4.2 技术路线 | 第29-30页 |
| 第2章 假单胞菌属对阳离子染料甲基紫的去除作用机制 | 第30-50页 |
| 2.1 实验材料与方法 | 第30-36页 |
| 2.1.1 实验试剂、细菌营养液组成及所用实验仪器设备 | 第30-33页 |
| 2.1.2 菌体吸附阳离子染料甲基紫实验 | 第33-34页 |
| 2.1.3 分析测试方法 | 第34-36页 |
| 2.1.4 模拟多糖、蛋白质及脂类物质作为吸附剂的吸附实验 | 第36页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第36-49页 |
| 2.2.1 细菌对阳离子染料甲基紫的去除 | 第36-40页 |
| 2.2.2 细菌吸附甲基紫前后的XPS和FTIR分析 | 第40-42页 |
| 2.2.3 电导率分析 | 第42-43页 |
| 2.2.4 电位滴定分析 | 第43-44页 |
| 2.2.5 胞外聚合物的荧光光谱分析 | 第44-46页 |
| 2.2.6 甲基紫在细胞中的分布 | 第46-49页 |
| 2.3 本章小结 | 第49-50页 |
| 第3章 假单胞菌属对非离子污染物多环芳烃(PAHs)苊的去除作用机制 | 第50-61页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第50-53页 |
| 3.1.1 实验试剂和细菌营养液组成 | 第50-51页 |
| 3.1.2 细菌对非离子污染物苊的去除实验 | 第51-52页 |
| 3.1.3 分析测试方法 | 第52页 |
| 3.1.4 模拟多糖、蛋白质及脂类物质作为吸附剂的吸附实验 | 第52-53页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第53-60页 |
| 3.2.1 细菌对多环芳烃苊的去除 | 第53-55页 |
| 3.2.2 提取EPS前后细菌表面表征 | 第55-56页 |
| 3.2.3 细菌提取EPS前后对苊的吸附 | 第56-57页 |
| 3.2.4 苊对菌产EPS的影响 | 第57页 |
| 3.2.5 苊在细胞中的分布 | 第57-60页 |
| 3.3 本章小结 | 第60-61页 |
| 第4章 假单胞菌属对共存污染物五氯酚和活性蓝13的去除作用机制 | 第61-76页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第61-65页 |
| 4.1.1 实验材料及试剂 | 第62页 |
| 4.1.2 仪器设备 | 第62-63页 |
| 4.1.3 标准储备液、营养液的配制及胞外聚合物的提取 | 第63页 |
| 4.1.4 菌体培养及污染物降解实验 | 第63-64页 |
| 4.1.5 分析方法 | 第64-65页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第65-75页 |
| 4.2.1 活性蓝13的投加次数对菌脱色的影响 | 第65-67页 |
| 4.2.2 不同浓度PCP对菌脱色RB13的影响 | 第67-69页 |
| 4.2.3 不同浓度PCP对菌生长的影响 | 第69-70页 |
| 4.2.4 不同浓度PCP对葡萄糖代谢的影响 | 第70-72页 |
| 4.2.5 PCP的去向分析 | 第72-75页 |
| 4.3 本章小结 | 第75-76页 |
| 第5章 假单胞菌属吸附去除类POPs的强化技术 | 第76-93页 |
| 5.1 实验材料与方法 | 第76-77页 |
| 5.1.1 实验试剂和细菌营养液组成 | 第76页 |
| 5.1.2 干菌和改性干菌的制备 | 第76页 |
| 5.1.3 PCP和RB13溶液的配制 | 第76-77页 |
| 5.1.4 干菌的吸附实验 | 第77页 |
| 5.1.5 干菌的脱附实验 | 第77页 |
| 5.1.6 分析方法 | 第77页 |
| 5.2 结果与讨论 | 第77-91页 |
| 5.2.1 干菌改性前后表征 | 第77-78页 |
| 5.2.2 改性干菌在pH为中性条件下的吸附 | 第78-85页 |
| 5.2.3 改性干菌在pH为酸性条件下的吸附 | 第85-88页 |
| 5.2.4 吸附机理探讨 | 第88-91页 |
| 5.3 本章小结 | 第91-93页 |
| 第6章 假单胞菌属降解去除类POPs的强化技术 | 第93-113页 |
| 6.1 实验材料与方法 | 第93-95页 |
| 6.1.1 实验材料及试剂 | 第93页 |
| 6.1.2 仪器设备 | 第93页 |
| 6.1.3 标准储备液、营养液的配制及胞外聚合物的提取 | 第93-94页 |
| 6.1.4 细菌培养及细菌降解污染物实验 | 第94页 |
| 6.1.5 AQS的固定 | 第94-95页 |
| 6.2 结果与讨论 | 第95-112页 |
| 6.2.1 氧化还原介体对菌降解POPs的强化 | 第95-104页 |
| 6.2.2 氧化还原介体的固定 | 第104-112页 |
| 6.3 本章小结 | 第112-113页 |
| 第7章 结论与建议 | 第113-116页 |
| 7.1 主要结论 | 第113-114页 |
| 7.2 创新点 | 第114-115页 |
| 7.3 存在问题及建议 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-128页 |
| 作者简历及博士期间科研成果 | 第128页 |
