| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第15-65页 |
| 1.1 生物医用高分子水凝胶概述 | 第15-16页 |
| 1.2 生物医用高分子水凝胶基底材料 | 第16-30页 |
| 1.2.1 合成高分子 | 第16-21页 |
| 1.2.1.1 Poly(ethylene glycol)聚乙二醇基水凝胶 | 第16-17页 |
| 1.2.1.2 Poly(vinyl alcohol)聚乙烯醇基水凝胶 | 第17-19页 |
| 1.2.1.3 Polyphosphazenes聚膦腈基水凝胶 | 第19-20页 |
| 1.2.1.4 其他常用合成高分子基水凝胶 | 第20-21页 |
| 1.2.2 天然高分子 | 第21-28页 |
| 1.2.2.1 (Hyaluronic acid)透明质酸基天然高分子水凝胶 | 第21-23页 |
| 1.2.2.2 (Chitosan)壳聚糖基天然高分子水凝胶 | 第23-24页 |
| 1.2.2.3 (Gelatin)明胶基天然高分子水凝胶 | 第24-25页 |
| 1.2.2.4 Poly(glutamic acid)聚谷氨酸基天然高分子水凝胶 | 第25-27页 |
| 1.2.2.5 其他天然高分子基水凝胶 | 第27-28页 |
| 1.2.3 多肽基水凝胶 | 第28-30页 |
| 1.3 生物医用高分子水凝胶交联方法 | 第30-42页 |
| 1.3.1 化学交联 | 第30-37页 |
| 1.3.1.1 自由基交联法 | 第30-31页 |
| 1.3.1.2 点击化学交联法 | 第31-37页 |
| 1.3.1.2.1 Diels-Alder反应 | 第31-33页 |
| 1.3.1.2.2 Thiol-ene反应 | 第33-34页 |
| 1.3.1.2.3 迈克尔加成(Michael-addition)反应 | 第34-35页 |
| 1.3.1.2.4 自然化学连接(Native Chemical Ligation)反应 | 第35-37页 |
| 1.3.2 物理交联 | 第37-39页 |
| 1.3.2.1 离子交联法 | 第37-38页 |
| 1.3.2.2 氢键交联法 | 第38页 |
| 1.3.2.3 热致交联法 | 第38-39页 |
| 1.3.3 酶交联 | 第39-42页 |
| 1.3.3.1 谷氨酰胺转移酶(mTG) | 第39-40页 |
| 1.3.3.2 辣根过氧化物酶(HRP) | 第40-41页 |
| 1.3.3.3 磷酸酶 | 第41-42页 |
| 1.4 生物医用高分子水凝胶应用领域 | 第42-47页 |
| 1.4.1 皮肤及创伤修复 | 第42-43页 |
| 1.4.2 神经再生 | 第43-44页 |
| 1.4.3 肝脏再生 | 第44-45页 |
| 1.4.4 生殖医学 | 第45页 |
| 1.4.5 肌肉骨骼 | 第45-46页 |
| 1.4.6 角膜接触镜 | 第46-47页 |
| 1.5 领域展望 | 第47页 |
| 1.6 本论文研究目的及主要内容 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-65页 |
| 第二章 NCL方法制备PGA/EPL基生物医用水凝胶 | 第65-87页 |
| 2.1 引言 | 第65-66页 |
| 2.2 实验部分 | 第66-73页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第66-67页 |
| 2.2.2 接枝半胱氨酸(C)的前体大分子EPL-C的合成 | 第67-69页 |
| 2.2.3 接枝硫内酯(HC)的前体大分子PGA-HC的合成 | 第69-70页 |
| 2.2.4 NCL水凝胶制备 | 第70-71页 |
| 2.2.5 平衡含水量测试 | 第71页 |
| 2.2.6 形态结构 | 第71-72页 |
| 2.2.7 力学性能 | 第72页 |
| 2.2.8 体外降解及溶胀实验 | 第72-73页 |
| 2.2.9 体外细胞毒性评价 | 第73页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第73-81页 |
| 2.3.1 两种前体的合成 | 第73-74页 |
| 2.3.2 水凝胶的制备 | 第74-76页 |
| 2.3.3 平衡含水量 | 第76-77页 |
| 2.3.4 形态结构 | 第77-78页 |
| 2.3.5 力学性能 | 第78-79页 |
| 2.3.6 体外降解及溶胀 | 第79-80页 |
| 2.3.7 体外细胞毒性评价 | 第80-81页 |
| 2.4 本章小结 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-87页 |
| 第三章 NCL方法制备PGA基生物医用水凝胶 | 第87-103页 |
| 3.1 引言 | 第87页 |
| 3.2 实验部分 | 第87-94页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第87-88页 |
| 3.2.2 接枝半胱氨酸(C)的前体大分子PGA-C的合成 | 第88-90页 |
| 3.2.3 接枝硫内酯(HC)的前体大分子PGA-HC的合成 | 第90-91页 |
| 3.2.4 水凝胶的制备 | 第91-92页 |
| 3.2.5 平衡含水量测试 | 第92页 |
| 3.2.6 形态结构 | 第92-93页 |
| 3.2.7 力学性能 | 第93页 |
| 3.2.8 体外酶降解及溶胀实验 | 第93页 |
| 3.2.9 体外细胞毒性评价 | 第93-94页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第94-101页 |
| 3.3.1 两种前体的合成 | 第94-95页 |
| 3.3.2 水凝胶的制备 | 第95-96页 |
| 3.3.3 平衡含水量 | 第96-97页 |
| 3.3.4 形态结构 | 第97-98页 |
| 3.3.5 力学性能 | 第98-99页 |
| 3.3.6 体外酶降解及溶胀 | 第99-100页 |
| 3.3.7 体外细胞毒性评价 | 第100-101页 |
| 3.4 本章小结 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-103页 |
| 第四章 可注射酶交联PGA水凝胶的制备与表征 | 第103-123页 |
| 4.1 引言 | 第103-104页 |
| 4.2 实验部分 | 第104-109页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第104-105页 |
| 4.2.2 酪胺接枝聚谷氨酸前体PGA-Ty的合成 | 第105-106页 |
| 4.2.3 PGA-Ty水凝胶的制备 | 第106-107页 |
| 4.2.4 水凝胶平衡含水量测试 | 第107页 |
| 4.2.5 形态结构 | 第107页 |
| 4.2.6 力学性能 | 第107-108页 |
| 4.2.7 体外酶降解实验 | 第108页 |
| 4.2.8 体外细胞毒性评价 | 第108-109页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第109-117页 |
| 4.3.1 酪胺接枝聚谷氨酸前体PGA-Ty的合成 | 第109-111页 |
| 4.3.2 原位形成PGA-Ty水凝胶 | 第111-112页 |
| 4.3.3 平衡含水量 | 第112-113页 |
| 4.3.4 形态结构 | 第113-114页 |
| 4.3.5 力学性能 | 第114-115页 |
| 4.3.6 体外酶降解 | 第115-116页 |
| 4.3.7 体外细胞毒性评价 | 第116-117页 |
| 4.4 本章小结 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-123页 |
| 第五章 双酶法明胶/透明质酸基互穿网络水凝胶的制备与表征 | 第123-143页 |
| 5.1 引言 | 第123-124页 |
| 5.2 实验部分 | 第124-130页 |
| 5.2.1 试剂与仪器 | 第124-125页 |
| 5.2.2 酪胺接枝透明质酸大分子的合成 | 第125-126页 |
| 5.2.3 流变测试 | 第126-127页 |
| 5.2.4 互穿网络水凝胶的制备 | 第127-128页 |
| 5.2.5 平衡含水量测试 | 第128页 |
| 5.2.6 力学性能 | 第128-129页 |
| 5.2.7 体外酶降解实验 | 第129页 |
| 5.2.8 体外细胞毒性评价 | 第129页 |
| 5.2.9 细胞接种及影像 | 第129-130页 |
| 5.2.10 统计分析 | 第130页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第130-139页 |
| 5.3.1 流变学研究 | 第131-133页 |
| 5.3.2 力学性能 | 第133-135页 |
| 5.3.3 体外酶降解 | 第135-136页 |
| 5.3.4 平衡含水量测试 | 第136-137页 |
| 5.3.5 体外细胞毒性评价 | 第137-138页 |
| 5.3.6 细胞接种及影像 | 第138-139页 |
| 5.4 本章小结 | 第139-140页 |
| 参考文献 | 第140-143页 |
| 第六章 全文总结与展望 | 第143-147页 |
| 6.1 全文总结 | 第143-145页 |
| 6.2 展望 | 第145-147页 |
| 附录 攻读博士学位期间所发表的学术论文及专利 | 第147-149页 |
| 致谢 | 第149页 |
