| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 第1章 引言 | 第14-16页 |
| 第2章 材料与方法 | 第16-30页 |
| 2.1 实验材料 | 第16-21页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第16页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第16-18页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.4 溶液配制 | 第19-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-30页 |
| 2.2.1 小胶质细胞培养与实验分组 | 第21-22页 |
| 2.2.2 MTS法检测BV2小胶质细胞活性 | 第22页 |
| 2.2.3 TUNEL法检测原代培养小胶质细胞凋亡 | 第22-23页 |
| 2.2.4 RT-PCR和qPCR分析 | 第23-25页 |
| 2.2.5 Western Blot分析 | 第25-26页 |
| 2.2.6 免疫组化和免疫荧光双标法 | 第26-28页 |
| 2.2.7 炎性因子、氧化损伤因子及eATP检测 | 第28-29页 |
| 2.2.8 统计学方法 | 第29-30页 |
| 第3章 结果 | 第30-51页 |
| 3.1 BV2小胶质细胞模型 | 第30-42页 |
| 3.1.1 BV2小胶质细胞荧光鉴定 | 第30-31页 |
| 3.1.2 各浓度gp120对细胞活性的影响 | 第31页 |
| 3.1.3 各浓度gp120对P2X_7 mRNA表达的影响 | 第31-32页 |
| 3.1.4 各浓度gp120对P2X_7受体蛋白表达的影响 | 第32-33页 |
| 3.1.5 MTS检测BV2小胶质细胞活性 | 第33页 |
| 3.1.6 免疫组化检测P2X_7受体表达 | 第33-34页 |
| 3.1.7 gp120对炎性因子和氧化损伤因子的影响 | 第34-36页 |
| 3.1.8 gp120上调P65 NF-κB的表达 | 第36-37页 |
| 3.1.9 MTS法筛选柚皮苷建模浓度 | 第37-38页 |
| 3.1.10 柚皮苷对BV2小胶质细胞损伤的保护作用 | 第38-39页 |
| 3.1.11 柚皮苷抑制gp120所致P2X_7 mRNA的表达上调 | 第39-40页 |
| 3.1.12 柚皮苷抑制gp120诱导的P2X_7受体蛋白表达上调 | 第40-41页 |
| 3.1.13 柚皮苷抑制gp120上调P65 NF-κB的表达 | 第41-42页 |
| 3.1.14 柚皮苷抑制gp120诱导的NO释放 | 第42页 |
| 3.2 原代培养小胶质细胞模型 | 第42-51页 |
| 3.2.1 大鼠原代小胶质细胞的培养及鉴定 | 第43-44页 |
| 3.2.2 gp120对细胞P2X_7 mRNA和受体蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.2.3 柚皮苷对gp120所致的细胞凋亡具有保护作用 | 第45-46页 |
| 3.2.4. 柚皮苷抑制gp120诱导的eATP释放 | 第46-47页 |
| 3.2.5 柚皮苷降低gp120所致P2X_7 mRNA表达上调 | 第47页 |
| 3.2.6 柚皮苷抑制gp120所致的P2X_7受体蛋白表达上调 | 第47-48页 |
| 3.2.7 柚皮苷降低P2X_7受体的免疫反应性 | 第48-50页 |
| 3.2.8 柚皮苷抑制gp120诱导的TNFα 和IL-1β 释放 | 第50-51页 |
| 第4章 讨论 | 第51-56页 |
| 第5章 结论 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第63-64页 |
| 综述 | 第64-75页 |
| 参考文献 | 第72-75页 |
