| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 缩略词 | 第22-23页 |
| 第一章 绪言 | 第23-40页 |
| 1.1 水稻栽培及意义 | 第23页 |
| 1.2 铝毒对植物的危害 | 第23-24页 |
| 1.3 植物适应铝毒的生理机理 | 第24-28页 |
| 1.3.1 外部排斥机制 | 第25-27页 |
| 1.3.1.1 细胞壁和黏胶对铝的固定作用 | 第25页 |
| 1.3.1.2 根际pH的提高 | 第25-26页 |
| 1.3.1.3 有机酸的分泌 | 第26-27页 |
| 1.3.2 内部耐受机制 | 第27-28页 |
| 1.3.2.1 有机酸对铝的螯合 | 第27页 |
| 1.3.2.2 液泡分离隔化作用 | 第27页 |
| 1.3.2.3 胞内抗氧化酶的诱导 | 第27-28页 |
| 1.4 植物适应铝毒的分子机制 | 第28-29页 |
| 1.4.1 铝诱导抗性基因的表达 | 第28-29页 |
| 1.4.2 铝诱导逆境蛋白的表达 | 第29页 |
| 1.5 质膜H~+-ATPase(PM H~+-ATPase)的研究进展 | 第29-31页 |
| 1.5.1 H~+-ATPase的结构 | 第29页 |
| 1.5.2 质膜H~+-ATPase的生理功能 | 第29-30页 |
| 1.5.3 逆境胁迫对质膜H~+-ATPase的影响 | 第30-31页 |
| 1.6. 14-3-3蛋白的研究进展 | 第31-32页 |
| 1.6.1 14-3-3蛋白的结构 | 第31页 |
| 1.6.2 14-3-3蛋白的功能 | 第31-32页 |
| 1.7 植物吸收氮素的研究进展 | 第32-35页 |
| 1.7.1 植物吸收氮素的机制 | 第33-34页 |
| 1.7.2 氮素吸收与质膜H~+-ATPase的关系 | 第34-35页 |
| 1.8 活性氧的研究进展 | 第35-37页 |
| 1.8.1 活性氧概况 | 第35-36页 |
| 1.8.2 活性氧和保护酶活性 | 第36-37页 |
| 1.8.3 活性氧与质膜H~+-ATPase的关系 | 第37页 |
| 1.9 抗坏血酸 | 第37-38页 |
| 1.9.1 抗坏血酸分子结构特点 | 第37页 |
| 1.9.2 植物根系抗坏血酸对Al胁迫的响应 | 第37-38页 |
| 1.10 本研究的目的和意义 | 第38-40页 |
| 第二章 铝胁迫对水稻的生理特性及生长的影响 | 第40-59页 |
| 2.1 实验材料和方法 | 第40-44页 |
| 2.1.1 水稻培育及铝胁迫处理 | 第40-41页 |
| 2.1.2 相对根生长率和铬天青S染色 | 第41页 |
| 2.1.3 根尖铝含量的测定 | 第41-42页 |
| 2.1.4 叶绿素含量测定 | 第42页 |
| 2.1.5 叶片光合作用参数的测 | 第42页 |
| 2.1.6 可溶性蛋白质含量的测定 | 第42页 |
| 2.1.7 可溶性总糖的测定 | 第42-43页 |
| 2.1.8 MDA含量的测定 | 第43页 |
| 2.1.9 H_2O_2含量的测定 | 第43页 |
| 2.1.10 Pro含量的测定 | 第43页 |
| 2.1.11 抗氧化酶活性的测定 | 第43-44页 |
| 2.2 数据统计分析 | 第44页 |
| 2.3 结果与分析 | 第44-54页 |
| 2.3.1 水稻耐铝性分析 | 第44-48页 |
| 2.3.1.1 铝胁迫对水稻根的相对伸长率的影响 | 第44-46页 |
| 2.3.1.2 根尖铬天青S染色 | 第46-48页 |
| 2.3.1.3 水稻根尖铝含量的影响 | 第48页 |
| 2.3.2 铝对水稻叶片叶绿素含量的影响 | 第48-49页 |
| 2.3.3 Al~(3+)胁迫水稻叶片光合特性参数的影响 | 第49-51页 |
| 2.3.4 Al~(3+)胁迫对水稻根尖可溶性糖、蛋白质和脯氨酸的影响 | 第51-52页 |
| 2.3.5 Al~(3+)胁迫对水稻根尖H_2O_2和MDA的影响 | 第52-53页 |
| 2.3.6 Al~(3+)胁迫对水稻根尖抗氧化酶的影响 | 第53-54页 |
| 2.3.6.1 SOD活性 | 第53页 |
| 2.3.6.2 POD活性 | 第53页 |
| 2.3.6.3 CAT活性 | 第53页 |
| 2.3.6.4 APX活性 | 第53-54页 |
| 2.4 讨论 | 第54-58页 |
| 2.5 结论 | 第58-59页 |
| 第三章 铝胁迫下不同氮源对水稻氮素吸收的影响 | 第59-86页 |
| 3.1 材料与方法 | 第60-63页 |
| 3.1.1 培育水稻 | 第60页 |
| 3.1.2 实验材料处理 | 第60-61页 |
| 3.1.2.1 硝态氮培养实验材料 | 第60页 |
| 3.1.2.2 硝铵氮培养实验材料 | 第60页 |
| 3.1.2.3 铵态氮培养实验材料 | 第60-61页 |
| 3.1.3 H_2O_2含量的测定 | 第61页 |
| 3.1.4 MDA含量的测定 | 第61页 |
| 3.1.5 根系还原力活性的测定 | 第61页 |
| 3.1.6 叶片叶绿素含量的测定 | 第61页 |
| 3.1.7 根尖铝含量的测定 | 第61页 |
| 3.1.8 抗氧化酶活性的测定 | 第61页 |
| 3.1.9 质膜H~+-ATPase及~H+-泵活性的测定 | 第61-62页 |
| 3.1.10 NO_3~--N的测定 | 第62页 |
| 3.1.11 NH_4~+-N的测定 | 第62-63页 |
| 3.1.12 总氮的测定 | 第63页 |
| 3.1.13 免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第63页 |
| 3.2 数据统计分析 | 第63页 |
| 3.3 结果与分析 | 第63-82页 |
| 3.3.1 不同氮源对根尖铝含量的影响 | 第63-64页 |
| 3.3.2 不同氮源对根尖H_2O_2含量的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.3 不同氮源对根尖MDA含量的影响 | 第65-67页 |
| 3.3.4 不同氮源对根尖根系还原力含量的影响 | 第67-68页 |
| 3.3.5 不同氮源对根尖抗氧化酶活性的影响 | 第68-72页 |
| 3.3.6 不同氮源对根尖NO~3~--N含量的影响 | 第72-74页 |
| 3.3.7 不同氮源对根尖NH_4~+-N含量的影响 | 第74-75页 |
| 3.3.8 不同氮源对根尖总N含量的影响 | 第75-77页 |
| 3.3.9 不同氮源对根尖质膜H~+-ATPase及H~+-泵活性的影响 | 第77-79页 |
| 3.3.10 免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第79-82页 |
| 3.4 讨论 | 第82-84页 |
| 3.5 结论 | 第84-86页 |
| 第四章 抗坏血酸对铝胁迫下水稻硝态氮吸收的调控 | 第86-104页 |
| 4.1 材料与方法 | 第86-88页 |
| 4.1.1 水稻培育与实验设计 | 第86-87页 |
| 4.1.2 H_2O_2含量的测定 | 第87页 |
| 4.1.3 MDA含量的测定 | 第87页 |
| 4.1.4 根系还原力活性的测定 | 第87页 |
| 4.1.5 根尖铝含量的测定 | 第87页 |
| 4.1.6 叶片叶绿素含量的测定 | 第87页 |
| 4.1.7 Pro含量的测定 | 第87页 |
| 4.1.8 抗氧化酶活性的测定 | 第87页 |
| 4.1.9 质膜H~+-ATPase及H~+-泵活性的测定 | 第87页 |
| 4.1.10 NO_3~--N的测定 | 第87页 |
| 4.1.11 免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第87页 |
| 4.1.12 硝酸还原酶活性的测定 | 第87-88页 |
| 4.1.13 内源AsA含量的测定 | 第88页 |
| 4.2 数据统计分析 | 第88页 |
| 4.3 结果与分析 | 第88-100页 |
| 4.3.1 AsA对水稻Al~(3+)胁迫的最佳处理浓度 | 第88-90页 |
| 4.3.1.1 AsA对Al~(3+)胁迫水稻H_2O_2含量的影响 | 第88-89页 |
| 4.3.1.2 AsA对Al~(3+)胁迫水稻H~+-泵活性的影响 | 第89-90页 |
| 4.3.2 AsA对Al~(3+)胁迫水稻根系还原力活性的影响 | 第90-91页 |
| 4.3.3 AsA对Al~(3+)胁迫水稻MDA及H_2O_2含量的影响 | 第91-92页 |
| 4.3.4 AsA对Al~(3+)胁迫水稻Pro含量的影响 | 第92页 |
| 4.3.5 AsA对Al~(3+)胁迫水稻叶片叶绿素含量的影响 | 第92-93页 |
| 4.3.6 AsA对Al~(3+)胁迫水稻抗氧化酶活性的影响 | 第93-95页 |
| 4.3.7 AsA对Al~(3+)胁迫水稻NO_3~--N的影响 | 第95-96页 |
| 4.3.8 AsA对Al~(3+)胁迫水稻硝酸还原酶的影响 | 第96页 |
| 4.3.9 AsA对Al~(3+)胁迫水稻根尖含铝量的影响 | 第96-97页 |
| 4.3.10 AsA对Al~(3+)胁迫水稻磷酸化的质膜H~+-ATPase与14-3-3蛋白互作水平的影响 | 第97-98页 |
| 4.3.11 AsA对Al~(3+)胁迫水稻质膜H~+-ATPase及H~+-泵活性的影响 | 第98-99页 |
| 4.3.12 AsA对Al~(3+)胁迫水稻内源AsA含量的影响 | 第99-100页 |
| 4.4 讨论 | 第100-102页 |
| 4.5 结论 | 第102-104页 |
| 第五章 铝胁迫下质膜H~+-ATPase和14-3-3对水稻硝态氮吸收的调控 | 第104-122页 |
| 5.1 材料与方法 | 第104-106页 |
| 5.1.1 水稻培育 | 第104页 |
| 5.1.2 实验材料处理 | 第104-105页 |
| 5.1.3 H_2O_2含量的测定 | 第105页 |
| 5.1.4 MDA含量的测定 | 第105页 |
| 5.1.5 根系还原力活性的测定 | 第105页 |
| 5.1.6 Pro含量的测定 | 第105页 |
| 5.1.7 叶片叶绿素含量的测定 | 第105页 |
| 5.1.8 根尖铝含量的测定 | 第105页 |
| 5.1.9 抗氧化酶活性的测定 | 第105页 |
| 5.1.10 质膜H~+-ATPase及H~+-泵活性的测定 | 第105页 |
| 5.1.11 NO_3~--N、NH_4~+-N的测定 | 第105-106页 |
| 5.1.12 免疫共沉淀(CO-IP)分析 | 第106页 |
| 5.2 数据统计分析 | 第106页 |
| 5.3 结果与分析 | 第106-120页 |
| 5.3.1 FC和AMP的最佳处理浓度 | 第106-111页 |
| 5.3.1.1 不同浓度FC和AMP处理24h对水稻的质膜H~+-ATPase活性和H~+-泵活性的影响 | 第106-109页 |
| 5.3.1.2 不同浓度FC和AMP处理24h对水稻根尖PM H~+- ATPase与14-3-3蛋白互作水平的影响 | 第109-111页 |
| 5.3.2 FC和AMP的最佳处理时间 | 第111-114页 |
| 5.3.2.1 最佳浓度FC和AMP处理不同时间对水稻的质膜H~+-ATPase活性和H~+-泵活性的影响 | 第111-112页 |
| 5.3.2.2 最佳浓度FC和AMP处理不同时间对水稻根尖PM H~+- ATPase与14-3-3 蛋白互作水平的影响 | 第112-114页 |
| 5.3.3 FC和AMP对Al~(3+)胁迫下水稻Al含量的影响 | 第114-115页 |
| 5.3.4 FC和AMP对Al~(3+)胁迫下水稻MDA和H_2O_2含量的影响 | 第115-116页 |
| 5.3.5 FC和AMP对Al~(3+)胁迫下水稻NO_3~--N吸收的影响 | 第116页 |
| 5.3.6 FC和AMP对Al~(3+)胁迫下水稻NH_4~+-N吸收的影响 | 第116-117页 |
| 5.3.7 FC和AMP对Al~(3+)胁迫下水稻根尖质膜H~+-ATPase水解活性(Pi)及H~+-泵活性的影响 | 第117-118页 |
| 5.3.8 FC和AMP处理对水稻根尖PM H~+- ATPase与14-3-3蛋白互作水平的影响 | 第118-120页 |
| 5.4 讨论 | 第120-121页 |
| 5.5 结论 | 第121-122页 |
| 第六章 总结与展望 | 第122-126页 |
| 6.1 总结 | 第122-124页 |
| 6.2 展望 | 第124-126页 |
| 致谢 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-145页 |
| 附录A 攻读博士期间发表的论文 | 第145页 |
