| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 缩略语表 | 第8-9页 |
| 1 综述 | 第9-20页 |
| 1.1 引言 | 第9-10页 |
| 1.2 植物雄性不育系研究进展 | 第10-12页 |
| 1.2.1 生长激素对植物雄性不育的影响 | 第10-11页 |
| 1.2.2 DNA甲基化对雄性不育的影响 | 第11页 |
| 1.2.3 蛋白质对雄性不育的影响 | 第11-12页 |
| 1.3 雄性不育系的类型 | 第12-14页 |
| 1.3.1 质不育型普通小麦研究进展 | 第12-13页 |
| 1.3.2 细胞核不育型普通小麦研究进展 | 第13页 |
| 1.3.3 光温敏小麦不育系研究进展 | 第13-14页 |
| 1.4 TaGASR相关基因研究进展 | 第14页 |
| 1.5 细胞分裂相关基因Dim1研究进展 | 第14-15页 |
| 1.6 转基因技术研究进展 | 第15-19页 |
| 1.6.1 农杆菌转化法 | 第16-17页 |
| 1.6.2 基因枪法 | 第17页 |
| 1.6.3 花粉管通道法 | 第17-18页 |
| 1.6.4 基因编辑技术 | 第18页 |
| 1.6.5 其他转基因方法在小麦育种中的应用 | 第18-19页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-31页 |
| 2.1 基因枪介导遗传转化 | 第20-26页 |
| 2.1.1 受体材料 | 第20页 |
| 2.1.2 试剂与仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.1.3 载体构建 | 第21页 |
| 2.1.4 培养基 | 第21-22页 |
| 2.1.5 统计方法 | 第22页 |
| 2.1.6 小麦幼胚组织培养方法 | 第22-23页 |
| 2.1.7 基因枪转化方法 | 第23-26页 |
| 2.2 农杆菌介导的遗传转化 | 第26-29页 |
| 2.2.1 受体材料 | 第26页 |
| 2.2.2 试剂与仪器设备 | 第26页 |
| 2.2.3 载体构建 | 第26页 |
| 2.2.4 培养基 | 第26-28页 |
| 2.2.5 小麦幼胚组织培养方法 | 第28页 |
| 2.2.6 侵染和共培养 | 第28-29页 |
| 2.3 转基因植株的T0代PCR检测 | 第29-31页 |
| 2.3.1 抗性再生苗总DNA的提取 | 第29-30页 |
| 2.3.2 引物设计 | 第30页 |
| 2.3.3 PCR检测 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-39页 |
| 3.1 不同小麦品种幼胚出愈情况统计与分析 | 第31页 |
| 3.2 基因枪介导基因TaMS337S-1 和TaMS337S-2 的遗传转化 | 第31-35页 |
| 3.2.1 基因枪介导TaMS337S-1 基因的遗传转化 | 第31-32页 |
| 3.2.2 基因枪介导小麦幼胚转TaMS337S-2 基因植株的获得 | 第32-34页 |
| 3.2.3 抗性植株的PCR检测结果 | 第34-35页 |
| 3.3 农杆菌介导基因TaMS337S-1 和TaMS337S-2 的遗传转化 | 第35-39页 |
| 3.3.1 农杆菌介导TaMS337S-1 基因的遗传转化 | 第35页 |
| 3.3.2 农杆菌介导小麦幼胚转TaMS337S-2 基因植株的获得 | 第35-36页 |
| 3.3.3 抗性植株的PCR检测结果 | 第36-37页 |
| 3.3.4 TaMS337S-1转基因株系的表型鉴定 | 第37-39页 |
| 4 讨论 | 第39-42页 |
| 4.1 转基因技术对小麦幼胚转化的影响 | 第39-40页 |
| 4.2 外源物质对小麦幼胚转化的影响 | 第40-42页 |
| 5 展望 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-51页 |
| 附录A | 第51-53页 |
| 致谢 | 第53页 |
