| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 红稗概况 | 第10-11页 |
| 1.1.1 红稗 | 第10页 |
| 1.1.2 红稗的食用价值和药用价值 | 第10-11页 |
| 1.2 多糖概况 | 第11-17页 |
| 1.2.1 多糖 | 第11-12页 |
| 1.2.2 多糖提取方法的研究 | 第12-13页 |
| 1.2.3 多糖纯化方法的研究 | 第13-14页 |
| 1.2.4 多糖含量的测定及其流变学特性的研究 | 第14-15页 |
| 1.2.5 多糖单糖组成 | 第15-16页 |
| 1.2.6 多糖生物活性的研究 | 第16-17页 |
| 1.3 本课题立题背景、研究意义与主要内容 | 第17-19页 |
| 1.3.1 立题背景与研究意义 | 第17页 |
| 1.3.2 课题主要内容 | 第17-19页 |
| 第二章 红稗多糖浸提工艺优化及流变学特性研究 | 第19-35页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第20页 |
| 2.2 试验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 红稗多糖提取工艺流程 | 第20-21页 |
| 2.2.2 多糖含量测定及标曲制作 | 第21页 |
| 2.2.3 红稗粗多糖提取率计算 | 第21-22页 |
| 2.2.4 单因素试验 | 第22页 |
| 2.2.5 响应面法优化红稗粗多糖提取工艺 | 第22-23页 |
| 2.2.6 红稗粗多糖粘度的测定 | 第23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-34页 |
| 2.3.1 单因素实验结果与分析 | 第23-26页 |
| 2.3.1.1 超声时间对红稗粗多糖提取的影响 | 第23-24页 |
| 2.3.1.2 料液比对红稗粗多糖提取的影响 | 第24页 |
| 2.3.1.3 水提温度对红稗粗多糖提取的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.1.4 水提时间对红稗粗多糖提取的影响 | 第25-26页 |
| 2.3.2 红稗粗多糖提取响应面实验结果及分析 | 第26-29页 |
| 2.3.2.1 各因素之间的交互作用 | 第28-29页 |
| 2.3.2.2 提取工艺条件的确定 | 第29页 |
| 2.3.3 红稗粗多糖粘度的测定 | 第29-34页 |
| 2.3.3.1 不同红稗多糖浓度对粘度的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.3.2 不同温度对红稗多糖粘度的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.3.3 不同热处理时间对红稗多糖粘度的影响 | 第31页 |
| 2.3.3.4 不同pH对红稗多糖粘度的影响 | 第31-32页 |
| 2.3.3.5 不同添加量抗氧化剂Vc对红稗多糖粘度的影响 | 第32页 |
| 2.3.3.6 不同添加量氧化剂H_2O_2对红稗多糖粘度的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.3.7 不同金属离子(Na~+、Ca~(2+)、Al~(3+))对红稗多糖粘度的影响 | 第33-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 红稗多糖的纯化和鉴定 | 第35-53页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第35-36页 |
| 3.1.1 材料 | 第35页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 3.2 试验方法 | 第36-40页 |
| 3.2.1 脱蛋白 | 第36-37页 |
| 3.2.1.1 木瓜蛋白酶酶解脱蛋白 | 第36页 |
| 3.2.1.2 Sevage法脱蛋白 | 第36页 |
| 3.2.1.3 酶法与sevage法除蛋白相结合脱蛋白 | 第36-37页 |
| 3.2.1.4 考马斯亮蓝法标准曲线制作 | 第37页 |
| 3.2.2 红稗多糖DEAE-52 纤维柱层析分离纯化 | 第37-38页 |
| 3.2.3 红稗多糖Sephadex G-100 凝胶柱层析分离纯化 | 第38-39页 |
| 3.2.4 红稗多糖紫外光谱扫描 | 第39页 |
| 3.2.5 红稗精多糖单糖组成的测定 | 第39-40页 |
| 3.2.5.1 红稗精多糖样品水解 | 第39页 |
| 3.2.5.2 红稗精多糖PMP衍生化样品的制备 | 第39页 |
| 3.2.5.3 单糖标品PMP衍生化样品的制备 | 第39-40页 |
| 3.2.5.4 色谱分离和检测条件 | 第40页 |
| 3.3 结果与分析 | 第40-51页 |
| 3.3.1 红稗多糖脱蛋白结果 | 第40-41页 |
| 3.3.1.1 蛋白标准曲线 | 第40页 |
| 3.3.1.2 不同方法脱蛋白结果比较 | 第40-41页 |
| 3.3.2 红稗多糖过DEAE-52 阴离子交换柱层析分离纯化 | 第41-47页 |
| 3.3.2.1 红稗中性多糖DEAE-52 交换柱层析洗脱速度的确定 | 第42-43页 |
| 3.3.2.2 红稗中性多糖DEAE-52 交换柱层析上样浓度的确定 | 第43-45页 |
| 3.3.2.3 红稗中性多糖DEAE-52 交换柱层析上样体积的确定 | 第45-47页 |
| 3.3.2.4 红稗酸性多糖DEAE-52 交换柱层析洗脱曲线 | 第47页 |
| 3.3.3 红稗多糖Sephadex G-100 凝胶柱层析分离纯化 | 第47-48页 |
| 3.3.4 红稗多糖紫外光谱扫描 | 第48-49页 |
| 3.3.5 柱前衍生化色谱法分析红稗单糖多糖组成 | 第49-51页 |
| 3.3.5.1 混合单糖标准品高效液相色谱图 | 第49-50页 |
| 3.3.5.2 红稗精多糖高效液相色谱图 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-53页 |
| 第四章 红稗多糖的生物活性 | 第53-63页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第53-54页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第53页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第53-54页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第54页 |
| 4.2 试验方法 | 第54-57页 |
| 4.2.1 不同浓度红稗多糖对羟基自由基·OH的清除作用 | 第54页 |
| 4.2.2 不同浓度红稗多糖对超氧阴离子O_2~-·的清除作用 | 第54-55页 |
| 4.2.3 不同浓度红稗多糖对过氧化氢H_2O_2的清除作用 | 第55页 |
| 4.2.4 不同浓度红稗多糖对DNA氧化损伤保护的作用 | 第55页 |
| 4.2.5 不同浓度红稗多糖对DPPH（二苯代苦味肼基自由基）自由基的清除 | 第55-56页 |
| 4.2.6 不同浓度红稗多糖抑菌活性的测定 | 第56-57页 |
| 4.2.7 试验数据处理 | 第57页 |
| 4.3 结果与分析 | 第57-62页 |
| 4.3.1 红稗多糖对羟基自由基·OH的清除作用 | 第57-58页 |
| 4.3.2 红稗多糖对超氧阴离子O_2~-·的清除作用 | 第58页 |
| 4.3.3 红稗多糖对过氧化氢H_2O_2的清除作用 | 第58-59页 |
| 4.3.4 红稗多糖对·OH引发的DNA损伤保护作用 | 第59-60页 |
| 4.3.5 红稗多糖对DPPH的清除作用 | 第60-61页 |
| 4.3.6 红稗多糖的抑菌作用 | 第61-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第五章 结论与展望 | 第63-66页 |
| 5.1 研究结果 | 第63-64页 |
| 5.2 论文创新 | 第64页 |
| 5.3 展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 硕士期间学术研究情况 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 声明 | 第73-74页 |
