| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-11页 |
| 前言 | 第11-12页 |
| 第一章 RAW 264.7 最佳炎症模型的确定与给药浓度的筛选 | 第12-17页 |
| 1 材料 | 第12-13页 |
| 1.1 试剂 | 第12页 |
| 1.2 细胞株 | 第12页 |
| 1.3 仪器 | 第12-13页 |
| 2 方法 | 第13-14页 |
| 2.1 细胞培养 | 第13页 |
| 2.2 MTT法毒性筛选 | 第13页 |
| 2.3 采用Griess法检测细胞上清液中NO的含量 | 第13-14页 |
| 3 结果 | 第14-15页 |
| 3.1 LPS不同浓度对RAW 264.7 炎症模型毒性的大小，筛选最佳LPS浓度结果 | 第14页 |
| 3.2 根据LPS不同浓度对RAW 264.7 炎症模型的刺激分泌NO量的多少筛选最佳LPS浓度结果 | 第14-15页 |
| 4 讨论 | 第15-16页 |
| 5 结论 | 第16-17页 |
| 第二章 甘肃栽培甘草内生菌的分离与内生菌发酵液与宿主水煎液、总黄酮、总皂苷对LPS致RAW 264.7 分泌炎症因子影响研究 | 第17-22页 |
| 1 材料与仪器 | 第17-18页 |
| 1.1 材料 | 第17页 |
| 1.2 仪器 | 第17-18页 |
| 2 方法 | 第18-20页 |
| 2.1 内生菌的分离与筛选 | 第18页 |
| 2.2 甘草水煎液的制备 | 第18页 |
| 2.3 甘草总黄酮和总皂苷制备 | 第18-19页 |
| 2.4 细胞培养与储存 | 第19页 |
| 2.5 内生菌发酵培养与内生菌发酵样品溶液的制备 | 第19页 |
| 2.6 采用Griess法检测细胞上清液中NO的含量 | 第19页 |
| 2.7 采用双抗体夹心ELISA实验 | 第19-20页 |
| 2.8 统计学处理 | 第20页 |
| 3 结果 | 第20-21页 |
| 4 讨论 | 第21页 |
| 5 结论 | 第21-22页 |
| 第三章 甘肃野生甘草内生菌的分离与甘草内生菌发酵液与宿主水煎液、总黄酮、总皂苷对LPS致RAW 264.7 分泌炎症因子影响研究 | 第22-27页 |
| 1 材料 | 第22-23页 |
| 1.1 药品 | 第22页 |
| 1.2 试剂 | 第22页 |
| 1.3 细胞株 | 第22页 |
| 1.4 仪器 | 第22-23页 |
| 2 方法 | 第23-25页 |
| 2.1 内生菌的分离与筛选 | 第23页 |
| 2.2 甘草水煎液的制备 | 第23页 |
| 2.3 甘草总黄酮和总皂苷制备 | 第23-24页 |
| 2.4 细胞培养与储存 | 第24页 |
| 2.5 内生菌发酵培养与内生菌发酵样品溶液的制备 | 第24页 |
| 2.6 采用Griess法检测细胞上清液中NO的含量 | 第24页 |
| 2.7 双抗体夹心ELISA实验 | 第24页 |
| 2.8 统计学处理 | 第24-25页 |
| 3 结果 | 第25页 |
| 4 讨论 | 第25-26页 |
| 5 结论 | 第26-27页 |
| 第四章 甘草有效菌株次生代谢产物对小鼠肺炎干预作用的研究 | 第27-32页 |
| 1 材料 | 第27-28页 |
| 1.1 药材 | 第27页 |
| 1.2 动物与试剂 | 第27页 |
| 1.3 主要试剂 | 第27页 |
| 1.4 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2 方法 | 第28-29页 |
| 2.1 甘草水煎液的制备 | 第28页 |
| 2.2 甘草总黄酮和总皂苷制备 | 第28页 |
| 2.3 甘草内生细菌发酵液的制备 | 第28页 |
| 2.4 甘草内生真菌发酵液的制备 | 第28页 |
| 2.5 模型的建立及给药 | 第28-29页 |
| 2.6 统计学处理 | 第29页 |
| 3 结果 | 第29-30页 |
| 4 讨论 | 第30-31页 |
| 5 结论 | 第31-32页 |
| 结语 | 第32-34页 |
| 1 结论 | 第32页 |
| 2 体会与展望 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-35页 |
| 文献综述 | 第35-43页 |
| 1 甘草抗炎作用 | 第35页 |
| 2 甘草资源概述 | 第35-36页 |
| 3 内生菌研究现状 | 第36-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 附录 1：实验操作图 | 第43-48页 |
| 附录 2：实验动物合格证 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 研究成果 | 第50页 |
