中文摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略词 | 第12-14页 |
第1章 前言 | 第14-21页 |
1.1 脊髓损伤病理生理及其治疗 | 第14-16页 |
1.2 巨噬细胞的极化 | 第16-18页 |
1.3 干细胞治疗与毛乳头细胞 | 第18-21页 |
第2章 材料与方法 | 第21-36页 |
2.1 材料 | 第21-23页 |
2.1.1 实验动物 | 第21页 |
2.1.2 主要仪器和设备 | 第21-22页 |
2.1.3 主要试剂 | 第22-23页 |
2.2 实验方法 | 第23-36页 |
2.2.1 大鼠触须DPCs及BMSCs的分离、培养 | 第23-25页 |
2.2.2 检测大鼠触须DPCs特异性标志物ALP的表达 | 第25-27页 |
2.2.3 大鼠触须DPCs的生物学特性分析 | 第27-31页 |
2.2.4 大鼠BMDMs的分离培养 | 第31页 |
2.2.5 大鼠BMDMs的鉴定 | 第31-33页 |
2.2.6 M1型巨噬细胞模型建立及鉴定 | 第33页 |
2.2.7 大鼠触须DPCs/BMSCs与M1型巨噬细胞共培养 | 第33页 |
2.2.8 qRT-PCR检测M1/M2型巨噬细胞标志物及特征性细胞因子的表达 | 第33-34页 |
2.2.9 Western blot检测M1/M2型巨噬细胞标志物及特征性细胞因子的表达 | 第34-35页 |
2.2.10 流式细胞术检测共培养前后巨噬细胞标志物的表达 | 第35页 |
2.2.11 统计学分析 | 第35-36页 |
第3章 实验结果 | 第36-49页 |
3.1 DPCs与BMSCs的分离、培养 | 第36-37页 |
3.2 大鼠触须DPCs标志物ALP鉴定 | 第37页 |
3.3 大鼠触须DPCs生物学特性分析 | 第37-40页 |
3.3.1 大鼠触须DPCs间充质干细胞标志物表达 | 第37-38页 |
3.3.2 大鼠触须DPCs多向分化潜能检测 | 第38-39页 |
3.3.3 大鼠触须DPCs炎症相关因子表达情况 | 第39-40页 |
3.4 原代BMDMs的分离、培养 | 第40-41页 |
3.5 原代BMDMs的鉴定 | 第41-42页 |
3.5.1 特异性酸性α-醋酸萘酚酯酶染色 | 第41页 |
3.5.2 巨噬细胞特异性标志物检测 | 第41-42页 |
3.6 M1型巨噬细胞极化模型的建立及其标志物检测 | 第42-43页 |
3.7 共培养比例及时间的确定 | 第43-45页 |
3.8 共培养后细胞形态变化 | 第45页 |
3.9 共培养后M1/M2型巨噬细胞特征性细胞因子表达水平变化 | 第45-46页 |
3.10 共培养后M1/M2型巨噬细胞标志物表达水平变化 | 第46-47页 |
3.11 共培养后M1/M2型巨噬细胞比例变化 | 第47-49页 |
第4章 讨论 | 第49-52页 |
第5章 结果与结论 | 第52-53页 |
5.1 结果 | 第52页 |
5.2 结论 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-61页 |
作者简介及在学期间所取得的成果 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |