中文摘要 | 第10-12页 |
英文摘要 | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第14-25页 |
1.1 盐胁迫对植物的伤害 | 第14-15页 |
1.1.1 渗透胁迫 | 第14-15页 |
1.1.2 离子胁迫 | 第15页 |
1.1.3 氧化胁迫 | 第15页 |
1.2 植物对盐胁迫的适应 | 第15-18页 |
1.2.1 渗透调节物质的合成 | 第16页 |
1.2.2 离子平衡稳态的调节 | 第16-17页 |
1.2.3 清除活性氧的机制 | 第17页 |
1.2.4 改变光合作用途径 | 第17页 |
1.2.5 SOS(Salt Overly Sensitive)信号转导途径 | 第17-18页 |
1.3 微丝和微丝结合蛋白 | 第18-20页 |
1.3.1 微丝的结构 | 第18-19页 |
1.3.2 微丝的功能 | 第19页 |
1.3.3 微丝结合蛋白及其功能 | 第19-20页 |
1.4 微丝结合蛋白ADF | 第20-21页 |
1.4.1 ADF的结构与功能 | 第20页 |
1.4.2 植物中ADF对微丝的调节 | 第20-21页 |
1.4.3 拟南芥中AtADF的研究进展 | 第21页 |
1.5 拟南芥中AtADF1的研究进展 | 第21-22页 |
1.6 微丝骨架在盐胁迫中的作用 | 第22-23页 |
1.7 本研究的目的和意义 | 第23-25页 |
第二章 拟南芥ADF1基因的克隆、超表达载体的构建与超表达植株的筛选和鉴定 | 第25-40页 |
2.1 材料与方法 | 第25-31页 |
2.1.1 材料 | 第25页 |
2.1.2 方法 | 第25-31页 |
2.2 结果与分析 | 第31-38页 |
2.2.1 PCR扩增产物的克隆和筛选 | 第31-32页 |
2.2.2 DNA序列分析 | 第32-33页 |
2.2.3 超表达载体菌液PCR鉴定和双酶切鉴定 | 第33-34页 |
2.2.4 超表达载体农杆菌菌液PCR鉴定 | 第34页 |
2.2.5 T2代转AtADF1基因植株鉴定 | 第34-35页 |
2.2.6 T3代转AtADF1基因植株鉴定 | 第35-36页 |
2.2.7 总RNA提取结果和引物特异性分析 | 第36页 |
2.2.8 检测AtADF1-OEs纯合植株中ADF1基因的表达情况 | 第36-37页 |
2.2.9 检测AtADF1-OEs纯合植株中AtADF1基因的相对表达情况 | 第37-38页 |
2.3 讨论与结论 | 第38-40页 |
2.3.1 讨论 | 第38-39页 |
2.3.2 结论 | 第39-40页 |
第三章 盐胁迫下拟南芥超表达ADF1基因对种子萌发和植株生长的影响 | 第40-46页 |
3.1 材料与方法 | 第40-41页 |
3.1.1 材料 | 第40页 |
3.1.2 方法 | 第40-41页 |
3.2 结果与分析 | 第41-44页 |
3.2.1 盐胁迫下拟南芥AtADF1-OEs纯合植株种子的萌发情况 | 第41-43页 |
3.2.2 盐胁迫下拟南芥AtADF1-OEs纯合植株的生长情况 | 第43-44页 |
3.3 讨论与结论 | 第44-46页 |
3.3.1 讨论 | 第44-45页 |
3.3.2 结论 | 第45-46页 |
第四章 盐胁迫下拟南芥AtADF1-OE中微丝动态变化 | 第46-49页 |
4.1 材料与方法 | 第46页 |
4.1.1 材料 | 第46页 |
4.1.2 方法 | 第46页 |
4.2 结果与分析 | 第46-47页 |
4.2.1 盐胁迫下WT和AtADF1-OE中微丝动态变化 | 第46-47页 |
4.3 讨论与结论 | 第47-49页 |
4.3.1 讨论 | 第47-48页 |
4.3.2 结论 | 第48-49页 |
第五章 盐胁迫下拟南芥AtADF1-OE中SOS家族基因的表达变化 | 第49-53页 |
5.1 材料与方法 | 第49-50页 |
5.1.1 材料 | 第49页 |
5.1.2 方法 | 第49-50页 |
5.2 结果与分析 | 第50-52页 |
5.2.1 总RNA提取结果 | 第50页 |
5.2.2 引物特异性分析 | 第50-51页 |
5.2.3 SOS家族基因在WT和AtADF1-OEs中的相对表达量 | 第51-52页 |
5.3 讨论与结论 | 第52-53页 |
5.3.1 讨论 | 第52页 |
5.3.2 结论 | 第52-53页 |
第六章 结论 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-60页 |
致谢 | 第60-61页 |