| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 常见英文缩列表 | 第12-13页 |
| 第1章 引言 | 第13-20页 |
| 1.1 电离辐射生物学概述 | 第13-15页 |
| 1.1.1 电离辐射简介 | 第13页 |
| 1.1.2 电离辐射损伤的分子机制 | 第13-14页 |
| 1.1.2.1 直接作用 | 第13-14页 |
| 1.1.2.2 间接作用 | 第14页 |
| 1.1.3 电离辐射对生物体的影响 | 第14页 |
| 1.1.4 辐射防护制剂 | 第14-15页 |
| 1.2 EGCG的研究近况 | 第15-16页 |
| 1.2.1 抗辐射 | 第15页 |
| 1.2.2 其他药用价值 | 第15-16页 |
| 1.3 MiRNA的简介 | 第16-18页 |
| 1.3.1 MiRNA的发生及作用机制 | 第16-17页 |
| 1.3.2 MiRNA与电离辐射 | 第17页 |
| 1.3.3 MiR-34a与Sirt1 | 第17-18页 |
| 1.4 本课题的立题背景和研究内容 | 第18-20页 |
| 1.4.1 立题背景 | 第18-19页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 1.4.2.1 电离辐射诱导小鼠肝脏及胸腺中miRNA差异表达 | 第19页 |
| 1.4.2.2 EGCG辐射防护机制的初步探索 | 第19-20页 |
| 第2章 电离辐射对小鼠肝脏中miRNA表达量的影响 | 第20-36页 |
| 2.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 方法 | 第21-25页 |
| 2.2.1 实验动物分组 | 第21页 |
| 2.2.2 总RNA提取与浓度检测 | 第21页 |
| 2.2.3 Small RNA建库与测序 | 第21-22页 |
| 2.2.4 数据分析 | 第22-23页 |
| 2.2.5 差异表达的miRNA的验证 | 第23-25页 |
| 2.2.5.1 引物设计 | 第23页 |
| 2.2.5.2 qRT-PCR | 第23-25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-33页 |
| 2.3.1 Small RNA类型以及长度分布 | 第25-26页 |
| 2.3.2 MiRNA的鉴定 | 第26-28页 |
| 2.3.3 差异表达miRNA分析 | 第28-29页 |
| 2.3.4 差异表达miRNA的验证 | 第29-30页 |
| 2.3.5 靶基因预测与功能分析 | 第30-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-35页 |
| 2.5 小结 | 第35-36页 |
| 第3章 电离辐射对小鼠胸腺中miRNA表达量的影响 | 第36-50页 |
| 3.1 材料 | 第36页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第36页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第36页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第36页 |
| 3.2 方法 | 第36-37页 |
| 3.2.1 实验动物与分组 | 第36页 |
| 3.2.2 总RNA提取与浓度检测 | 第36页 |
| 3.2.3 Small RNA建库与测序 | 第36页 |
| 3.2.4 数据分析 | 第36-37页 |
| 3.2.5 差异表达的miRNA的验证 | 第37页 |
| 3.2.5.1 引物设计 | 第37页 |
| 3.2.5.2 qRT-PCR | 第37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-47页 |
| 3.3.1 Small RNA类型以及长度分布 | 第37-39页 |
| 3.3.2 MiRNA的鉴定 | 第39-40页 |
| 3.3.3 差异表达miRNA分析 | 第40-44页 |
| 3.3.4 差异表达miRNA的验证 | 第44页 |
| 3.3.5 靶基因预测与功能分析 | 第44-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-48页 |
| 3.5 小结 | 第48-50页 |
| 第4章 EGCG体内外抗辐射防护机制的初步探究 | 第50-67页 |
| 4.1 材料与试剂 | 第50-52页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第50页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第51-52页 |
| 4.1.4 常用试剂配制 | 第52页 |
| 4.2 方法 | 第52-58页 |
| 4.2.1 细胞培养 | 第52-53页 |
| 4.2.1.1 细胞复苏 | 第52页 |
| 4.2.1.2 细胞传代 | 第52-53页 |
| 4.2.1.3 细胞冻存 | 第53页 |
| 4.2.2 实验动物分组 | 第53页 |
| 4.2.3 细胞活力测定（CCK8法） | 第53-54页 |
| 4.2.4 qRT-PCR | 第54-56页 |
| 4.2.4.1 总RNA的提取 | 第54页 |
| 4.2.4.2 引物设计 | 第54-55页 |
| 4.2.4.3 反转录 | 第55页 |
| 4.2.4.4 qRT-PCR | 第55-56页 |
| 4.2.5 Western blot | 第56-57页 |
| 4.2.6 细胞转染 | 第57-58页 |
| 4.3 结果与分析 | 第58-64页 |
| 4.3.1 EGCG对AML-12 细胞活力以及miR-34a表达量的影响 | 第58-60页 |
| 4.3.1.1 不同浓度EGCG对AML-12 细胞活力的影响 | 第58-59页 |
| 4.3.1.2 EGCG对AML-12 细胞中miR-34a表达量的影响 | 第59-60页 |
| 4.3.2 基于miR-34a的EGCG体外抗辐射作用机制的初步探索 | 第60-62页 |
| 4.3.2.1 EGCG对辐射后的AML-12 细胞活力的影响 | 第60-61页 |
| 4.3.2.2 EGCG对辐射后的AML-12 细胞中miR-34a表达量的影响 | 第61-62页 |
| 4.3.3 MiR-34a- Sirt1分子调控机制的初步探索 | 第62-63页 |
| 4.3.4 基于miR-34a- Sirt1的EGCG体内辐射防护作用机制的初步探索 | 第63-64页 |
| 4.3.4.1 辐射对小鼠体内miR-34a、Sirt1表达量的影响 | 第63页 |
| 4.3.4.2 EGCG对辐射小鼠体内miR-34a、Sirt1表达量的影响 | 第63-64页 |
| 4.4 讨论 | 第64-65页 |
| 4.5 小结 | 第65-67页 |
| 第5章 结论与展望 | 第67-69页 |
| 5.1 主要结论 | 第67-68页 |
| 5.2 工作展望 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-78页 |
| 个人简历、硕士期间发表的学术论文及研究成果 | 第78-79页 |
| 致谢 | 第79页 |
