| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 微流控芯片的起源和发展 | 第11-13页 |
| 1.1.1 微流控芯片介绍 | 第11-12页 |
| 1.1.2 微流控芯片在细胞生物学上的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.3 常用微流控芯片材料 | 第13页 |
| 1.2 芯片上细胞实验的国内外研究 | 第13-16页 |
| 1.3 本课题研究内容及创新点 | 第16-17页 |
| 注释 | 第17-22页 |
| 第2章 基于Polydimethylsiloxane（PDMS）/玻璃微流控芯片的细胞培养和条件优化 | 第22-28页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-24页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2.3 微流控芯片的设计和制作 | 第23页 |
| 2.2.4 微流控芯片制作流程优化及中细胞培养条件优化 | 第23-24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-26页 |
| 2.3.1 芯片通道高度的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2 培养基中胎牛血清含量对细胞贴附的影响 | 第25页 |
| 2.3.3 通道中预修饰蛋白种类和浓度对细胞贴附的影响 | 第25-26页 |
| 2.4 结论 | 第26-28页 |
| 第3章 构建微流控细胞芯片研究TGF-β1 诱导A549上皮间质转化与细胞粘附力间的关联 | 第28-43页 |
| 3.1 引言 | 第28-29页 |
| 3.2 实验部分 | 第29-32页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第29页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第29页 |
| 3.2.3 微流控芯片的设计和流体力学 | 第29-30页 |
| 3.2.4 微流控芯片修饰和细胞培养 | 第30-31页 |
| 3.2.5 微流控芯片上细胞粘附力强度测试 | 第31-32页 |
| 3.2.6 细胞荧光染色 | 第32页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第32-39页 |
| 3.3.1 微流控芯片设计与加工 | 第32-33页 |
| 3.3.2 微流控芯片细胞粘附力的测试技术 | 第33-35页 |
| 3.3.3 细胞外基质蛋白对细胞粘附力强度的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.4 转化生长因子TGF-β1 对A549细胞粘附力的影响 | 第36-39页 |
| 3.4 结论 | 第39页 |
| 注释 | 第39-43页 |
| 第4章 构建微流控细胞芯片用于研究小分子抑制剂协同对抗肿瘤细胞迁移及细胞间相互作用 | 第43-63页 |
| 4.1 前言 | 第43-45页 |
| 4.2 实验部分 | 第45-50页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第46页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.2.4 自行构建的微流控芯片的应用研究 | 第47-50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-59页 |
| 4.3.1 经济实用型的微流控装置可以很容易实现通道腔室之间的液体交流 | 第50-52页 |
| 4.3.2 根据体外伤口愈合分析的原理在用户友好型的芯片上伤口愈合分析 | 第52-53页 |
| 4.3.3 通过芯片上的伤口愈合分析方法表征威罗菲尼与吉非替尼对黑素瘤细胞迁移的协同抑制作用 | 第53-54页 |
| 4.3.4 芯片中细胞共培养 | 第54-58页 |
| 4.3.5 MTT实验结果 | 第58-59页 |
| 4.4 结论 | 第59-60页 |
| 注释 | 第60-63页 |
| 第5章 结论与展望 | 第63-66页 |
| 5.1 结论 | 第63-64页 |
| 5.2 展望 | 第64-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
| 发表论文成果 | 第68页 |
