| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 第一章 文献研究 | 第16-34页 |
| 第一节 近江牡蛎研究概况 | 第16-18页 |
| 一、近江牡蛎分类及分布 | 第16页 |
| 二、近江牡蛎养殖 | 第16页 |
| 三、牡蛎营养组成 | 第16-17页 |
| 四、牡蛎应用价值 | 第17-18页 |
| 第二节 贝类多糖研究进展 | 第18-23页 |
| 一、贝类多糖的提取 | 第18-20页 |
| 二、贝类多糖分离、纯化 | 第20页 |
| 三、贝类多糖结构鉴定 | 第20-21页 |
| 四、贝类多糖生物活性 | 第21-23页 |
| 第三节 多糖分子修饰及构效关系研究概况 | 第23-34页 |
| 一、多糖分子的主要改性方法 | 第23-28页 |
| 二、分子修饰对多糖理化性质的影响 | 第28-30页 |
| 三、分子修饰对多糖生物活性的影响 | 第30-34页 |
| 第二章 近江牡蛎多糖提取、除蛋白及分离纯化 | 第34-52页 |
| 一、实验材料 | 第34-35页 |
| (一) 原料 | 第34页 |
| (二) 主要试剂 | 第34页 |
| (三) 主要仪器 | 第34-35页 |
| 二、实验方法 | 第35-39页 |
| (一) 近江牡蛎多糖的提取及含量计算 | 第35-36页 |
| (二) 磁性壳聚糖微球除蛋白质 | 第36-38页 |
| (三) DEAE-纤维素-52凝胶初步分离ORP | 第38-39页 |
| (四) Sephadex G100凝胶进一步纯化 | 第39页 |
| 三、实验结果 | 第39-51页 |
| (一) 近江牡蛎总多糖及蛋白质含量 | 第39-40页 |
| (二) MCM除蛋白结果 | 第40-50页 |
| (三) 近江牡蛎多糖分离纯化结果 | 第50-51页 |
| 四、小结与讨论 | 第51-52页 |
| 第三章 近江牡蛎多糖理化性质及结构鉴定 | 第52-68页 |
| 一、实验材料 | 第52-53页 |
| (一) 原料 | 第52页 |
| (二) 主要试剂 | 第52-53页 |
| (三) 主要仪器 | 第53页 |
| 二、实验方法 | 第53-57页 |
| (一) 总糖含量测定 | 第53页 |
| (二) 蛋白质含量测定 | 第53页 |
| (三) 硫酸基含量测定 | 第53-54页 |
| (四) 糖醛酸含量的测定 | 第54页 |
| (五) 相对粘度测定 | 第54页 |
| (六) 样品纯度鉴定及相对分子质量测定 | 第54-55页 |
| (七) 单糖组成分析 | 第55页 |
| (八) 傅里叶红外光谱(FT-IR)分析 | 第55页 |
| (九) 紫外光谱扫描 | 第55-56页 |
| (十) 甲基化反应及GC/MS分析 | 第56页 |
| (十一) 核磁共振波谱分析 | 第56页 |
| (十二) 刚果红实验 | 第56-57页 |
| 三、实验结果 | 第57-67页 |
| (一) 总糖含量 | 第57页 |
| (二) 蛋白质含量 | 第57页 |
| (三) 硫酸基含量 | 第57页 |
| (四) 糖醛酸含量 | 第57-58页 |
| (五) 相对粘度 | 第58页 |
| (六) 样品纯度鉴定及相对分子质量测定 | 第58-59页 |
| (七) 单糖组成分析 | 第59-60页 |
| (八) 傅里叶红外光谱(FT-IR)结果 | 第60页 |
| (九) 紫外光谱图 | 第60-61页 |
| (十) 甲基化分析 | 第61-63页 |
| (十一) NMR分析 | 第63-66页 |
| (十二) 刚果红实验结果 | 第66-67页 |
| 四、本章小结 | 第67-68页 |
| 第四章 近江牡蛎多糖硒化修饰 | 第68-73页 |
| 一、实验材料 | 第68-69页 |
| (一) 原料 | 第68页 |
| (二) 主要试剂 | 第68页 |
| (三) 仪器设备 | 第68-69页 |
| 二、实验方法 | 第69-70页 |
| (一) 近江牡蛎多糖硒化衍生物的制备 | 第69页 |
| (二) 硒元素含量测定 | 第69-70页 |
| 三、实验结果 | 第70-71页 |
| (一) 线性考察结果 | 第70-71页 |
| (二) 精密度考察结果 | 第71页 |
| (三) 稳定性考察结果 | 第71页 |
| (四) 加样回收率考察结果 | 第71页 |
| (五) 样品含量测定 | 第71页 |
| 四、讨论 | 第71-73页 |
| 第五章 ORP抑制H_2O_2诱导TM4细胞氧化应激作用机制研究 | 第73-89页 |
| 一、实验材料 | 第73-74页 |
| (一) 细胞系 | 第73页 |
| (二) 原料 | 第73页 |
| (三) 主要仪器 | 第73页 |
| (四) 主要试剂 | 第73-74页 |
| 二、实验方法 | 第74-79页 |
| (一) 试剂配制 | 第74-75页 |
| (二) 细胞处理 | 第75页 |
| (三) 细胞毒性实验 | 第75页 |
| (四) 细胞分组及给药 | 第75-76页 |
| (五) ORP抑制H_2O_2诱导的TM4细胞氧化应激的生化检测 | 第76页 |
| (六) Western Blot技术检测Nrf2/ARE通路相关基因表达 | 第76-79页 |
| (七) 统计分析 | 第79页 |
| 三、实验结果 | 第79-87页 |
| (一) 细胞毒性实验结果 | 第80页 |
| (二) ORP_p及ORP_(Se)干预H_2O_2诱导的TM4细胞氧化应激存活情况 | 第80-81页 |
| (三) ORP_p及ORP_(Se)抑制H_2O_2诱导的TM4细胞氧化应激的生化检测 | 第81-82页 |
| (四) Western Blot分析结果 | 第82-87页 |
| 四、小结与讨论 | 第87-89页 |
| 第六章 ORP抑制环磷酰胺所致小鼠生殖损伤及其作用机制 | 第89-114页 |
| 一、实验材料 | 第89-90页 |
| (一) 动物 | 第89页 |
| (二) 材料 | 第89页 |
| (三) 主要试剂 | 第89-90页 |
| (四) 主要设备 | 第90页 |
| 二、实验方法 | 第90-93页 |
| (一) 环磷酰胺氧化应激致生殖损伤雄性小鼠分组 | 第90-91页 |
| (二) 小鼠体重及生殖器官指数 | 第91页 |
| (三) 精子参数分析 | 第91页 |
| (四) 小鼠睾丸组织切片分析 | 第91页 |
| (五) 血液血细胞分析及血清生化指标检测 | 第91页 |
| (六) PCR技术测定睾丸组织Nrf2/ARE相关基因表达水平 | 第91-93页 |
| (七) WB技术测定睾丸组织Nrf2/ARE信号通路相关基因表达水平 | 第93页 |
| (八) 统计学方法 | 第93页 |
| 三、实验结果 | 第93-112页 |
| (一) 对小鼠体重及睾丸指数的影响 | 第93-94页 |
| (二) 睾丸病理检查结果 | 第94-96页 |
| (三) 精子参数分析 | 第96-99页 |
| (四) 血液指标 | 第99-101页 |
| (五) 血清生化指标 | 第101-102页 |
| (六) PCR分析结果 | 第102-105页 |
| (七) Western Blot分析结果 | 第105-112页 |
| 四、小结与讨论 | 第112-114页 |
| 结语 | 第114-116页 |
| 参考文献 | 第116-131页 |
| 附录 | 第131-132页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第132-134页 |
| 致谢 | 第134-136页 |
| 统计学审核证明 | 第136页 |
