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慢病毒介导狨猴B2m基因沉默的初步研究

摘要第5-7页
ABSTRACT第7-9页
绪论第10-21页
    1 引言第10-11页
    2 B2M基因概述第11-12页
    3 MHC Ⅰ类分子概述第12-13页
    4 慢病毒介导RNAI的概述第13-18页
    5 狨猴第18页
    6 CD4/CD8比值的意义第18-19页
    7 本论文研究的意义和展望第19-21页
材料和方法第21-42页
    1 实验材料第21-25页
        1.1 质粒、菌株、细胞和实验动物第21页
        1.2 主要试剂第21-22页
        1.3 主要仪器第22-23页
        1.4 主要溶液的配制第23-25页
    2 实验方法第25-42页
        2.1 慢病毒RNA干扰载体的构建第25-30页
        2.2 质粒提取及浓度的测定第30-31页
        2.3 293T细胞的复苏、传代及冻存第31-32页
        2.4 重组质粒转染293 T细胞第32-33页
        2.5 用荧光激活细胞分选仪(FACS)分选红色荧光细胞第33页
        2.6 RNA提取、逆转录及SYBR-Green法RT-PCR第33-35页
        2.7 慢病毒干扰载体的包装第35-36页
        2.8 慢病毒浓缩与纯化第36页
        2.9 慢病毒感染293T细胞第36-37页
        2.10 慢病毒滴度检测第37页
        2.11 慢病毒的储存与稀释第37-38页
        2.12 慢病毒后肢静脉注射狨猴第38-39页
        2.13 PCR检测血液中的病毒第39-40页
        2.14 血常规检测第40-41页
        2.15 狨猴全血淋巴细胞比例检测(FACS)第41页
        2.16 统计学方法第41-42页
实验结果第42-57页
    1 慢病毒RNA干扰载体第42页
    2 表达载体的线性化第42-43页
    3 菌液PCR鉴定阳性克隆第43-44页
    4 shRNA靶点细胞水平的筛选验证第44-45页
    5 慢病毒包装第45-46页
    6 病毒滴度测定第46-48页
    7 流式细胞术检测正常狨猴CD4、CD8分子水平的变化第48-54页
    8 流式细胞术检测狨猴CD4和CD8细胞绝对值的变化第54-56页
    9 分析实验组狨猴CD4/CD8变化第56-57页
讨论第57-61页
总结第61-62页
英文缩略表第62-63页
参考文献第63-68页
致谢第68-69页
个人信息第69-70页

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