| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 绪论 | 第14-58页 |
| 1. 前言 | 第14-15页 |
| 2. 基于β-环糊精主客体作用的纳米药物递送体系 | 第15-37页 |
| 2.1 基于β-环糊精的囊泡体系 | 第17-25页 |
| 2.1.1 两亲性β-环糊精自组装成囊泡 | 第17-20页 |
| 2.1.2 通过β-环糊精主客体作用构建囊泡 | 第20-25页 |
| 2.2 基于β-环糊精的胶束体系 | 第25-37页 |
| 2.2.1 基于β-环糊精的准嵌段共聚物构建胶束 | 第26-30页 |
| 2.2.2 侧链接枝β-环糊精主客体作用构建胶束 | 第30-37页 |
| 3. 苯硼酸的分子识别及其在纳米载药体系中的应用 | 第37-45页 |
| 3.1 苯硼酸在肿瘤靶向中的应用 | 第38-42页 |
| 3.2 利用苯硼酸的分子识别自组装纳米粒子 | 第42-45页 |
| 4. 基于聚乙烯基吡咯烷酮的纳米载药体系 | 第45-47页 |
| 5. 基于超分子识别构建纳米载药体系的机遇与挑战 | 第47-48页 |
| 6. 本论文的主要内容与创新点 | 第48-51页 |
| 6.1 本论文的主要内容 | 第48-50页 |
| 6.2 本论文的创新点 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 第二章 PVP-PCL准嵌段聚合物的合成及纳米粒子制备 | 第58-76页 |
| 1. 前言 | 第58-59页 |
| 2. 实验部分 | 第59-65页 |
| 2.1 实验材料 | 第59页 |
| 2.2 测试仪器与表征方法 | 第59-60页 |
| 2.3 材料合成部分 | 第60-65页 |
| 2.3.1 金刚烷端基聚己内酯(ada-PCL)的合成 | 第60页 |
| 2.3.2 合成6位羟基接枝4根PVP链的β-CD(CD-PVP4) | 第60-62页 |
| 2.3.3 合成6位羟基接枝7根PVP链的β-CD(CD-PVP7) | 第62-64页 |
| 2.3.4 PVP-PCL准嵌段聚合物胶束的合成 | 第64-65页 |
| 3. 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 3.1 ada-PCL以及CD-PVP高分子的合成 | 第66-71页 |
| 3.2 PVP-PCL准嵌段聚合物胶束的制备与表征 | 第71-73页 |
| 4. 本章小结 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-76页 |
| 第三章 PVP-PCL准嵌段聚合物胶束的载药及体内外实验 | 第76-96页 |
| 1. 前言 | 第76-77页 |
| 2. 实验部分 | 第77-82页 |
| 2.1 实验材料 | 第77页 |
| 2.2 细胞及动物来源 | 第77页 |
| 2.3 测试仪器 | 第77页 |
| 2.4 胶束粒子的蛋白吸附试验 | 第77-78页 |
| 2.5 胶束粒子稳定性试验 | 第78页 |
| 2.6 卡巴他赛负载PVP7-PCL胶束的制备 | 第78页 |
| 2.7 卡巴他赛测定方法的建立及标准曲线的绘制 | 第78-79页 |
| 2.8 载药纳米胶束载药量以及包封率的测定 | 第79页 |
| 2.9 负载CBZ的PVP7-PCL纳米胶束的体外释放 | 第79页 |
| 2.10 体外细胞毒性试验 | 第79-80页 |
| 2.11 PVP7-PCL纳米粒子的细胞摄取 | 第80页 |
| 2.12 3D细胞对PVP7-PCL胶束的摄取以及渗透 | 第80-81页 |
| 2.13 PVP7-PCL胶束的体内分布实验 | 第81页 |
| 2.14 负载CBZ的PVP7-PCL胶束粒子的体内抑瘤效果研究 | 第81-82页 |
| 2.15 统计学分析 | 第82页 |
| 3. 结果与讨论 | 第82-93页 |
| 3.1 PVP-PCL准嵌段聚合物胶束的蛋白吸附 | 第82-83页 |
| 3.2 PVP7-PCL胶束粒子的药物负载及释放行为研究 | 第83-85页 |
| 3.3 负载CBZ的PVP7-PCL胶束粒子的细胞毒性研究 | 第85-88页 |
| 3.4 PVP7-PCL胶束的细胞摄取行为 | 第88页 |
| 3.5 PVP7-PCL胶束粒子对3D细胞的渗透研究 | 第88页 |
| 3.6 PVP7-PCL胶束粒子的体内分布试验 | 第88-91页 |
| 3.7 负载CBZ的PVP7-PCL胶束的体内抗肿瘤研究 | 第91-93页 |
| 4. 本章小结 | 第93-94页 |
| 参考文献 | 第94-96页 |
| 第四章 羟基喜树碱交联纳米粒子的研究 | 第96-121页 |
| 1. 前言 | 第96-97页 |
| 2. 实验部分 | 第97-103页 |
| 2.1 实验材料 | 第97页 |
| 2.2 细胞实验材料来源 | 第97页 |
| 2.3 测试仪器与表征方法 | 第97-98页 |
| 2.4 材料合成部分 | 第98-101页 |
| 2.4.1 聚乙二醇大分子引发剂PEG-Br的合成 | 第98-99页 |
| 2.4.2 甲基丙烯酸丙酮缩甘油酯(SMA)的合成 | 第99页 |
| 2.4.3 嵌段聚合物PEG-PSMA的合成 | 第99页 |
| 2.4.4 PEG-PSMA的脱保护 | 第99-100页 |
| 2.4.5 4-羟甲基苯硼酸频哪醇酯(HMPBA-pin)的合成 | 第100页 |
| 2.4.6 HMPBA-pin-SA的合成 | 第100页 |
| 2.4.7 HCPT-di(HMPBA-pin)的合成 | 第100-101页 |
| 2.4.8 HCPT-diHMPBA的合成 | 第101页 |
| 2.5 羟基喜树碱交联纳米粒子的合成 | 第101-102页 |
| 2.6 HCPT标准曲线的配制以及粒子载药量及包封率的测定 | 第102页 |
| 2.7 纳米粒子药物释放曲线的测定 | 第102-103页 |
| 2.8 体外细胞毒性试验 | 第103页 |
| 2.9 体外细胞摄取实验 | 第103页 |
| 3. 结果与讨论 | 第103-117页 |
| 3.1 羟基喜树碱交联剂HCPT-diHMPBA的合成及表征 | 第103-107页 |
| 3.2 PEG-PGMA的合成及表征 | 第107-109页 |
| 3.3 HCPT交联纳米粒子的合成及表征 | 第109-112页 |
| 3.4 纳米粒子的pH响应性及其稳定性 | 第112-113页 |
| 3.5 纳米粒子的载药及药物释放行为 | 第113-115页 |
| 3.6 纳米粒子的细胞毒性试验 | 第115-116页 |
| 3.7 HCPT交联纳米粒子的细胞摄取 | 第116-117页 |
| 4. 本章小结 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-121页 |
| 第五章 聚乙烯基吡咯烷酮修饰的10-羟基喜树碱前药的研究 | 第121-140页 |
| 1. 前言 | 第121-122页 |
| 2. 实验部分 | 第122-126页 |
| 2.1 实验材料 | 第122页 |
| 2.2 细胞及动物来源 | 第122页 |
| 2.3 测试仪器与表征方法 | 第122-123页 |
| 2.4 材料合成部分 | 第123-125页 |
| 2.4.1 2-(乙基黄原酸)丙酸(acid-CTA)的合成 | 第123页 |
| 2.4.2 羟基喜树碱链转移剂HCPT-CTA的合成 | 第123页 |
| 2.4.3 PVP连接羟基喜树碱前药HCPT-PVP的制备 | 第123-124页 |
| 2.4.4 HCPT-PVP纳米粒子的制备 | 第124页 |
| 2.4.5 HCPT-CTA标准曲线的建立以及HCPT-PVP载药量的计算 | 第124页 |
| 2.4.6 HCPTT-PVP胶束粒子临界胶束浓度(CMC)的測定 | 第124-125页 |
| 2.5 体内实验部分 | 第125-126页 |
| 3. 结果与讨论 | 第126-137页 |
| 3.1 羟基喜树碱衍生物HCPT-CTA的合成及表征 | 第126-128页 |
| 3.2 羟基喜树碱前药HCPT-PVP的合成及表征 | 第128-132页 |
| 3.3 HCPT-PVP纳米粒子的形成及表征 | 第132-134页 |
| 3.4 HCPT-PVP的体内实验结果 | 第134-137页 |
| 4. 本章小结 | 第137-139页 |
| 参考文献 | 第139-140页 |
| 第六章 展望 | 第140-142页 |
| 已发表与待发表论文 | 第142-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
