| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-17页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-15页 |
| 1.1.1 抑郁症概述 | 第11-12页 |
| 1.1.2 抑郁症的神经炎症假说 | 第12-13页 |
| 1.1.3 小胶质细胞与神经炎症 | 第13页 |
| 1.1.4 细胞凋亡与抑郁 | 第13-14页 |
| 1.1.5 神经炎症与细胞凋亡 | 第14页 |
| 1.1.6 丹酚酸B的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2 本文的主要研究内容 | 第15-17页 |
| 第二章 丹酚酸B对小鼠抑郁样行为的影响 | 第17-28页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 实验材料 | 第17-18页 |
| 2.2.0 实验动物 | 第17页 |
| 2.2.1 实验设备和仪器 | 第17页 |
| 2.2.2 实验药品与试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.3 药物配制及注射 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.3.1 实验动物分组 | 第18页 |
| 2.3.2 慢性温和应激 | 第18-19页 |
| 2.3.3 糖水偏好测试 | 第19页 |
| 2.3.4 强迫游泳 | 第19页 |
| 2.3.5 悬尾实验 | 第19页 |
| 2.3.6 自主活动测试 | 第19页 |
| 2.3.7 统计分析 | 第19-20页 |
| 2.4 实验结果 | 第20-26页 |
| 2.4.1 丹酚酸B对糖水偏好的影响 | 第20-21页 |
| 2.4.2 丹酚酸B对糖水消耗量的影响 | 第21-22页 |
| 2.4.3 丹酚酸B对强迫游泳测试结果的影响 | 第22-23页 |
| 2.4.4 丹酚酸B对悬尾测试结果的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.5 丹酚酸B对自主活动的影响 | 第24-25页 |
| 2.4.6 丹酚酸B对体重的影响 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结与讨论 | 第26-28页 |
| 第三章 丹酚酸B对海马和皮层区凋亡细胞的影响 | 第28-36页 |
| 3.1 引言 | 第28页 |
| 3.2 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.2.1 实验设备和仪器 | 第28页 |
| 3.2.2 实验药品与试剂 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-30页 |
| 3.3.1 动物灌注取脑 | 第29页 |
| 3.3.2 免疫组织化学染色 | 第29-30页 |
| 3.3.3 细胞密度及海马体积估算 | 第30页 |
| 3.3.4 统计分析 | 第30页 |
| 3.4 实验结果 | 第30-34页 |
| 3.4.1 丹酚酸B对海马和皮层区凋亡细胞的影响 | 第30-33页 |
| 3.4.2 丹酚酸B对海马区细胞密度的影响 | 第33页 |
| 3.4.3 丹酚酸B对海马体积的影响 | 第33-34页 |
| 3.5 本章小结与讨论 | 第34-36页 |
| 第四章 丹酚酸B对小胶质细胞的影响 | 第36-54页 |
| 4.1 引言 | 第36页 |
| 4.2 实验材料 | 第36-37页 |
| 4.2.1 实验设备和仪器 | 第36页 |
| 4.2.2 实验药品与试剂 | 第36-37页 |
| 4.3 实验方法 | 第37-41页 |
| 4.3.1 原代小胶质细胞的培养 | 第37页 |
| 4.3.2 原代胶质细胞的分离与纯化 | 第37-38页 |
| 4.3.3 原代小胶质细胞药物处理 | 第38页 |
| 4.3.4 提取细胞总RNA | 第38页 |
| 4.3.5 反转录合成cDNA模板 | 第38页 |
| 4.3.6 Real-Time PCR检测细胞因子的表达 | 第38-40页 |
| 4.3.7 细胞的固定 | 第40-41页 |
| 4.3.8 免疫组织/细胞染色 | 第41页 |
| 4.3.9 统计分析 | 第41页 |
| 4.4 实验结果 | 第41-52页 |
| 4.4.1 丹酚酸B对于小胶质细胞激活形态的影响 | 第41-44页 |
| 4.4.2 细胞凋亡与小胶质细胞激活相关联 | 第44-45页 |
| 4.4.3 丹酚酸B对小胶质细胞表面标志的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.4 丹酚酸B对神经炎症及小胶质细胞表型Marker的影响 | 第46-50页 |
| 4.4.5 丹酚酸B对原代小胶质细胞的影响 | 第50-52页 |
| 4.5 本章小结与讨论 | 第52-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 攻读硕士学位期间取得的成果 | 第61-62页 |