中文摘要 | 第2-3页 |
ABSTRACT | 第3-4页 |
中文文摘 | 第5-9页 |
绪论 | 第9-17页 |
第一章 胶质细胞的原代培养、分离纯化及纯度鉴定 | 第17-29页 |
前言 | 第17页 |
1.1 实验材料 | 第17-19页 |
1.1.1 实验动物 | 第17页 |
1.1.2 主要实验仪器与设备 | 第17-18页 |
1.1.3 实验耗材 | 第18页 |
1.1.4 主要实验试剂 | 第18-19页 |
1.1.5 溶液配制 | 第19页 |
1.2 实验方法 | 第19-23页 |
1.2.1 胶质细胞原代培养 | 第19-20页 |
1.2.2 小胶质细胞的纯化 | 第20页 |
1.2.3 星形胶质细胞的纯化 | 第20-21页 |
1.2.4 胶质细胞观察与鉴定 | 第21页 |
1.2.5 胶质细胞纯度计算 | 第21-22页 |
1.2.6 统计学处理 | 第22-23页 |
1.3 实验结果 | 第23-26页 |
1.3.1 胶质细胞混合培养 | 第23-24页 |
1.3.2 小胶质细胞免疫细胞化学鉴定 | 第24页 |
1.3.3 不同纯化方法的星形胶质细胞观察与鉴定 | 第24-26页 |
1.4 讨论 | 第26-29页 |
第二章 AM对离体培养的小胶质细胞的作用 | 第29-43页 |
前言 | 第29页 |
2.1 实验材料 | 第29-31页 |
2.1.1 实验动物 | 第29页 |
2.1.2 主要实验仪器和器材 | 第29-30页 |
2.1.3 实验耗材 | 第30页 |
2.1.4 主要实验试剂 | 第30页 |
2.1.5 引物序列 | 第30-31页 |
2.1.6 溶液配制 | 第31页 |
2.2 实验方法 | 第31-36页 |
2.2.1 实验分组及步骤 | 第31-32页 |
(1) AM对小胶质细胞形态的影响 | 第32页 |
(2) AM对小胶质细胞细胞表面活化因子的影响 | 第32页 |
2.2.2 免疫细胞化学 | 第32-33页 |
2.2.3 实时定量PCR | 第33-34页 |
2.2.4 siRNA的构建和转染 | 第34-35页 |
2.2.5 统计学处理 | 第35-36页 |
2.3 实验结果 | 第36-41页 |
2.3.1 AM通过AM受体诱导小胶质细胞形态变化 | 第36-37页 |
2.3.2 AM_(22-52)对AM诱导的RAMP2,TLR4,P2X4 mRNA的影响 | 第37-38页 |
2.3.3 最佳siRNA的确定 | 第38-39页 |
2.3.4 RAMP2 siRNA最佳干扰浓度确定 | 第39-40页 |
2.3.5 RAMP2 siRNA对AM诱导的RAMP2,TLR4,P2X4 mRNA的影响 | 第40-41页 |
2.4 讨论 | 第41-43页 |
第三章 AM对离体培养的星形胶质细胞的作用 | 第43-55页 |
前言 | 第43页 |
3.1 实验材料 | 第43-46页 |
3.1.1 实验动物 | 第43页 |
3.1.2 主要实验仪器和器材 | 第43-44页 |
3.1.3 实验耗材 | 第44页 |
3.1.4 主要实验试剂 | 第44-45页 |
3.1.5 溶液配制 | 第45页 |
3.1.6 引物序列 | 第45-46页 |
3.2 实验方法 | 第46-48页 |
3.2.1 实验分组及步骤 | 第46页 |
3.2.2 原代星形胶质细胞培养及分离纯化 | 第46页 |
3.2.3 免疫细胞化学 | 第46-47页 |
3.2.4 实时定量PCR | 第47-48页 |
3.2.5 统计学处理 | 第48页 |
3.3 实验结果 | 第48-52页 |
3.3.1 AM激活脊髓星形胶质细胞的形态学改变 | 第48-50页 |
3.3.2 AM通过AM受体诱导脊髓星形胶质细胞形态改变 | 第50-51页 |
3.3.3 AM通过AM受体刺激脊髓星形胶质细胞COX-2 mRNA表达增加 | 第51页 |
3.3.4 AM孵育脊髓星形胶质细胞不改变CCL2 mRNA表达 | 第51-52页 |
3.4 讨论 | 第52-55页 |
第四章 结论 | 第55-57页 |
英文缩写 | 第57-61页 |
参考文献 | 第61-67页 |
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第67-69页 |
致谢 | 第69-71页 |
个人简历 | 第71-75页 |