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肾上腺髓质素对小胶质细胞和星形胶质细胞作用的体外研究

中文摘要第2-3页
ABSTRACT第3-4页
中文文摘第5-9页
绪论第9-17页
第一章 胶质细胞的原代培养、分离纯化及纯度鉴定第17-29页
    前言第17页
    1.1 实验材料第17-19页
        1.1.1 实验动物第17页
        1.1.2 主要实验仪器与设备第17-18页
        1.1.3 实验耗材第18页
        1.1.4 主要实验试剂第18-19页
        1.1.5 溶液配制第19页
    1.2 实验方法第19-23页
        1.2.1 胶质细胞原代培养第19-20页
        1.2.2 小胶质细胞的纯化第20页
        1.2.3 星形胶质细胞的纯化第20-21页
        1.2.4 胶质细胞观察与鉴定第21页
        1.2.5 胶质细胞纯度计算第21-22页
        1.2.6 统计学处理第22-23页
    1.3 实验结果第23-26页
        1.3.1 胶质细胞混合培养第23-24页
        1.3.2 小胶质细胞免疫细胞化学鉴定第24页
        1.3.3 不同纯化方法的星形胶质细胞观察与鉴定第24-26页
    1.4 讨论第26-29页
第二章 AM对离体培养的小胶质细胞的作用第29-43页
    前言第29页
    2.1 实验材料第29-31页
        2.1.1 实验动物第29页
        2.1.2 主要实验仪器和器材第29-30页
        2.1.3 实验耗材第30页
        2.1.4 主要实验试剂第30页
        2.1.5 引物序列第30-31页
        2.1.6 溶液配制第31页
    2.2 实验方法第31-36页
        2.2.1 实验分组及步骤第31-32页
            (1) AM对小胶质细胞形态的影响第32页
            (2) AM对小胶质细胞细胞表面活化因子的影响第32页
        2.2.2 免疫细胞化学第32-33页
        2.2.3 实时定量PCR第33-34页
        2.2.4 siRNA的构建和转染第34-35页
        2.2.5 统计学处理第35-36页
    2.3 实验结果第36-41页
        2.3.1 AM通过AM受体诱导小胶质细胞形态变化第36-37页
        2.3.2 AM_(22-52)对AM诱导的RAMP2,TLR4,P2X4 mRNA的影响第37-38页
        2.3.3 最佳siRNA的确定第38-39页
        2.3.4 RAMP2 siRNA最佳干扰浓度确定第39-40页
        2.3.5 RAMP2 siRNA对AM诱导的RAMP2,TLR4,P2X4 mRNA的影响第40-41页
    2.4 讨论第41-43页
第三章 AM对离体培养的星形胶质细胞的作用第43-55页
    前言第43页
    3.1 实验材料第43-46页
        3.1.1 实验动物第43页
        3.1.2 主要实验仪器和器材第43-44页
        3.1.3 实验耗材第44页
        3.1.4 主要实验试剂第44-45页
        3.1.5 溶液配制第45页
        3.1.6 引物序列第45-46页
    3.2 实验方法第46-48页
        3.2.1 实验分组及步骤第46页
        3.2.2 原代星形胶质细胞培养及分离纯化第46页
        3.2.3 免疫细胞化学第46-47页
        3.2.4 实时定量PCR第47-48页
        3.2.5 统计学处理第48页
    3.3 实验结果第48-52页
        3.3.1 AM激活脊髓星形胶质细胞的形态学改变第48-50页
        3.3.2 AM通过AM受体诱导脊髓星形胶质细胞形态改变第50-51页
        3.3.3 AM通过AM受体刺激脊髓星形胶质细胞COX-2 mRNA表达增加第51页
        3.3.4 AM孵育脊髓星形胶质细胞不改变CCL2 mRNA表达第51-52页
    3.4 讨论第52-55页
第四章 结论第55-57页
英文缩写第57-61页
参考文献第61-67页
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果第67-69页
致谢第69-71页
个人简历第71-75页

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