| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 1 文献综述 | 第14-48页 |
| ·引言 | 第14页 |
| ·疫苗免疫学概述 | 第14-24页 |
| ·疫苗概述 | 第14-15页 |
| ·免疫系统概述 | 第15-19页 |
| ·免疫应答概述 | 第19-24页 |
| ·疫苗佐剂概述 | 第24-32页 |
| ·颗粒型疫苗佐剂 | 第25-29页 |
| ·分子免疫刺激剂 | 第29-32页 |
| ·聚合物纳微球作为疫苗佐剂的优势 | 第32-43页 |
| ·纳微球可在其表面携载抗原作为疫苗佐剂 | 第34-36页 |
| ·纳微球包埋抗原作为疫苗佐剂 | 第36-37页 |
| ·纳微球疫苗佐剂的免疫增强作用 | 第37-43页 |
| ·立题依据和研究目标 | 第43-48页 |
| ·论文立题依据 | 第43-44页 |
| ·论文工作目标及策略 | 第44-48页 |
| 2 基于多巴胺修饰的仿病原体纳徽球的制备及其佐剂效果考察 | 第48-78页 |
| ·引言 | 第48-50页 |
| ·实验材料与方法 | 第50-62页 |
| ·实验试剂 | 第50-51页 |
| ·实验设备和仪器 | 第51-52页 |
| ·纳微球的制备 | 第52-53页 |
| ·纳微球的表征 | 第53-54页 |
| ·DCs的提取与培养 | 第54页 |
| ·纳微球的细胞毒性检测 | 第54-55页 |
| ·纳微球的生物安全性初步检测 | 第55页 |
| ·细菌内毒素检测 | 第55页 |
| ·注射部位炎性因子和趋化因子的表达 | 第55-57页 |
| ·注射部位免疫细胞的招募 | 第57-58页 |
| ·DCs活化和成熟的诱导 | 第58-59页 |
| ·纳微球佐剂对小鼠免疫效果的检测 | 第59-62页 |
| ·统计分析 | 第62页 |
| ·结果与讨论 | 第62-75页 |
| ·纳微球的制备与表征 | 第62-66页 |
| ·注射部位细胞因子和趋化因子的表达水平 | 第66-68页 |
| ·注射部位免疫细胞的招募 | 第68-69页 |
| ·DCs的活化和成熟 | 第69-71页 |
| ·脾细胞的增殖水平 | 第71-72页 |
| ·T细胞介导的细胞免疫反应 | 第72-74页 |
| ·抗原特异性抗体的分泌水平 | 第74-75页 |
| ·本章小结 | 第75-78页 |
| 3 胞内pH敏感型PLGA纳微球佐剂的构建 | 第78-96页 |
| ·引言 | 第78-79页 |
| ·实验材料与方法 | 第79-83页 |
| ·实验试剂 | 第79页 |
| ·实验设备和仪器 | 第79-80页 |
| ·纳微球的制备与表征 | 第80-83页 |
| ·纳微球对DCs的细胞毒性检测 | 第83页 |
| ·统计分析 | 第83页 |
| ·结果与讨论 | 第83-94页 |
| ·胞内pH敏感型纳微球的制备 | 第83-87页 |
| ·胞内pH敏感型纳微球的表征 | 第87-93页 |
| ·纳微球对DCs的细胞毒性检测 | 第93-94页 |
| ·本章小结 | 第94-96页 |
| 4 胞内pH敏感型PLGA纳徽球的佐剂效应评价 | 第96-116页 |
| ·引言 | 第96-97页 |
| ·实验材料与方法 | 第97-104页 |
| ·实验试剂 | 第97-98页 |
| ·实验设备和仪器 | 第98页 |
| ·细菌内毒素检测 | 第98页 |
| ·DCs对抗原的摄取行为 | 第98-99页 |
| ·抗原在DCs胞内的定位 | 第99-100页 |
| ·抗原的交叉提呈 | 第100页 |
| ·胞内交叉提呈关键分子的活化效应 | 第100-101页 |
| ·DCs的活化和成熟 | 第101页 |
| ·小鼠的免疫效果评价 | 第101-103页 |
| ·统计分析 | 第103-104页 |
| ·结果与讨论 | 第104-114页 |
| ·DCs对抗原的摄取 | 第104页 |
| ·抗原在DCs胞内的定位 | 第104-105页 |
| ·抗原的交叉提呈水平 | 第105-106页 |
| ·胞内交叉提呈关键分子的活化效应 | 第106-108页 |
| ·DCs的活化与成熟 | 第108-110页 |
| ·淋巴细胞的激活水平 | 第110-111页 |
| ·T细胞相关免疫应答 | 第111-113页 |
| ·体液免疫应答水平 | 第113-114页 |
| ·本章小结 | 第114-116页 |
| 5 免疫刺激剂共递送的胞内pH敏感型纳徽球复合疫苗佐剂的构建与评价 | 第116-142页 |
| ·引言 | 第116-117页 |
| ·实验材料与方法 | 第117-127页 |
| ·实验试剂 | 第117-118页 |
| ·实验设备和仪器 | 第118-119页 |
| ·纳微球的制备与表征 | 第119-120页 |
| ·疫苗制剂的制备与表征 | 第120页 |
| ·DCs对抗原的摄取 | 第120-121页 |
| ·抗原在胞内的加工处理和交叉提呈 | 第121页 |
| ·胞内交叉提呈关键分子的活化水平 | 第121-122页 |
| ·胞内相关模式识别受体的活化水平 | 第122-123页 |
| ·DCs的体外活化与成熟 | 第123-124页 |
| ·复合佐剂对模型抗原OVA的免疫效果 | 第124-126页 |
| ·统计分析 | 第126-127页 |
| ·结果与讨论 | 第127-139页 |
| ·纳微球复合佐剂的制备与表征 | 第127-128页 |
| ·抗原的摄取 | 第128-129页 |
| ·抗原在胞内的加工处理 | 第129-130页 |
| ·抗原在胞内的交叉提呈 | 第130-131页 |
| ·胞内交叉提呈关键分子的活化效应 | 第131-132页 |
| ·胞内相关模式识别受体的活化水平 | 第132-133页 |
| ·DCs的活化与成熟 | 第133-135页 |
| ·抗体反应 | 第135-136页 |
| ·脾细胞增殖水平 | 第136页 |
| ·脾细胞分泌细胞因子的水平 | 第136-137页 |
| ·杀伤性T细胞活化效应 | 第137-138页 |
| ·记忆性T细胞反应 | 第138-139页 |
| ·本章小结 | 第139-142页 |
| 6 结论与展望 | 第142-148页 |
| ·主要结论 | 第142-144页 |
| ·创新点总结 | 第144-145页 |
| ·今后工作建议 | 第145-148页 |
| 附录 主要符号表 | 第148-150页 |
| 参考文献 | 第150-168页 |
| 个人简历及发表文章目录 | 第168-172页 |
| 致谢 | 第172-173页 |