| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-15页 |
| 引言 | 第15-17页 |
| 第一部分 文献研究 | 第17-22页 |
| ·古代医学和现代医学对缺血性脑血管病的认识 | 第17-22页 |
| ·古代医学对缺血性脑血管病的认识 | 第17页 |
| ·现代医学对缺血性脑血管病的认识 | 第17-19页 |
| ·脑缺血与内源性神经干细胞研究进展 | 第19页 |
| ·针刺督脉治疗对脑缺血后内源性神经干细胞的影响研究 | 第19-22页 |
| 第二部分 实验研究 | 第22-83页 |
| ·材料 | 第22-24页 |
| ·实验动物 | 第22页 |
| ·主要器材 | 第22-23页 |
| ·主要试剂及药品 | 第23-24页 |
| ·主要试剂配置 | 第24页 |
| ·方法 | 第24-32页 |
| ·实验设计 | 第24页 |
| ·实验分组 | 第24页 |
| ·MCAO大鼠模型制备 | 第24-25页 |
| ·电针治疗参数 | 第25-26页 |
| ·MCAO大鼠神经功能缺损评分 | 第26页 |
| ·Brdu给药方法 | 第26页 |
| ·取材与切片 | 第26页 |
| ·TTC染色 | 第26页 |
| ·尼氏(Nissl)染色 | 第26-27页 |
| ·免疫荧光双标组化染色步骤 | 第27页 |
| ·细胞计数 | 第27页 |
| ·蛋白免疫印迹法检测PRG5、RhoA、NogoA、LPA、的表达 | 第27-29页 |
| ·荧光实时定量PCR(Real time quantitative PCR)测PRG5的表达变化 | 第29-32页 |
| ·统计学处理 | 第32页 |
| ·结果 | 第32-72页 |
| ·MCAO大鼠神经功能评分 | 第32-33页 |
| ·TTC染色 | 第33-35页 |
| ·尼氏染色 | 第35-36页 |
| ·Brdu免疫荧光阳性细胞的表达 | 第36-39页 |
| ·BrdU/Nestin免疫荧光阳性细胞的表达 | 第39-41页 |
| ·Brdu/DCX免疫荧光阳性细胞的表达 | 第41-43页 |
| ·Brdu/NeuN免疫荧光阳性细胞的表达 | 第43-45页 |
| ·Brdu/GFAP免疫荧光阳性细胞的表达 | 第45-46页 |
| ·RNAi慢病毒载体的制备 | 第46-57页 |
| ·立体定位注射 | 第57-58页 |
| ·免疫荧光检测RNAi转导后大鼠模型中Brdu/Nestin的阳性细胞表达变化 | 第58-59页 |
| ·免疫荧光检测RNAi转导后大鼠模型中Brdu/DCX的阳性细胞表达变化 | 第59页 |
| ·免疫荧光检测RNAi转导后大鼠模型中Brdu/NeuN的阳性细胞表达变化 | 第59-60页 |
| ·免疫荧光检测RNAi转导后大鼠模型中BrdU/GFAP的阳性细胞表达变化 | 第60-62页 |
| ·电针对MCAO模型大鼠海马PRG5 mRNA表达的影响 | 第62-63页 |
| ·各组大鼠缺血侧RhoA蛋白表达检测结果 | 第63-66页 |
| ·各组大鼠海马区NogoA蛋白表达检测结果 | 第66-68页 |
| ·各组大鼠海马区LPA蛋白表达检测结果 | 第68-70页 |
| ·各组大鼠海马区PRG5蛋白表达检测结果 | 第70-72页 |
| ·讨论 | 第72-83页 |
| ·选题依据 | 第72-74页 |
| ·RhoA信号通路与重要指标的选择依据 | 第74-76页 |
| ·MCAO动物模型的制备 | 第76-77页 |
| ·干预手段的选择 | 第77页 |
| ·电针对MCAO大鼠神经缺损功能评分的影响 | 第77-78页 |
| ·电针对MCAO大鼠脑组织形态学的影响 | 第78页 |
| ·电针对海马区eNSCs增殖与分化的影响 | 第78-79页 |
| ·shRNA沉默PRG5基因 | 第79-80页 |
| ·电针对MCAO大鼠RhoA信号通路的影响 | 第80页 |
| ·电针介导PRG5抑制RhoA信号通路对eNSCs增殖与分化的影响 | 第80-83页 |
| 结语 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-88页 |
| 在校期间发表论文情况 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 附件 | 第90-91页 |
| 中文详细摘要 | 第91-97页 |
