| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-11页 |
| 主要符号说明 | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| ·色素 | 第12-18页 |
| ·类胡萝卜素 | 第12-14页 |
| ·类胡萝卜素的生物合成 | 第12-13页 |
| ·类胡萝卜素的作用 | 第13-14页 |
| ·虾青素 | 第14-17页 |
| ·雨生红球藻中虾青素的合成机制 | 第14-16页 |
| ·虾青素的作用 | 第16页 |
| ·雨生红球藻积累虾青素的条件 | 第16-17页 |
| ·雨生红球藻中的叶绿素 | 第17-18页 |
| ·植物的类异戊二烯生物合成途径及基因 | 第18-24页 |
| ·植物的类异戊二烯生物合成途径 | 第18-21页 |
| ·MVA 途径 | 第18-19页 |
| ·MEP 途径 | 第19-20页 |
| ·MVA 途径和 MEP 途径的关系 | 第20-21页 |
| ·IPP 生物合成途径中相关的酶及基因 | 第21-24页 |
| ·DXS | 第21-22页 |
| ·DXR | 第22页 |
| ·CMS、CMK、MCS、HDS、IDS | 第22-24页 |
| ·IPP 生物合成途径与色素的关系 | 第24-25页 |
| ·拟采用的研究技术路线 | 第25-26页 |
| ·本论文研究内容及意义 | 第26-27页 |
| ·研究目的 | 第26页 |
| ·研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 雨生红球藻在不同环境条件下生物量的积累 | 第27-34页 |
| ·材料与方法 | 第27-29页 |
| ·藻种、试剂及仪器 | 第27页 |
| ·藻种的培养 | 第27-28页 |
| ·胁迫条件的设定 | 第28-29页 |
| ·正常条件培养雨生红球藻（CK） | 第28页 |
| ·用 N 饥饿诱导雨生红球藻（-N） | 第28-29页 |
| ·用强光诱导雨生红球藻（HL） | 第29页 |
| ·用 N 饥饿和强光诱导雨生红球藻（HL-N） | 第29页 |
| ·雨生红球藻细胞密度—光密度标准曲线的制作 | 第29页 |
| ·藻细胞密度的测定 | 第29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-33页 |
| ·显微镜观察雨生红球藻形态变化 | 第29-30页 |
| ·在胁迫条件下显微观察雨生红球藻 | 第30-31页 |
| ·雨生红球藻细胞密度—光密度标准曲线 | 第31-32页 |
| ·胁迫条件对雨生红球藻细胞生长的影响 | 第32-33页 |
| ·结论 | 第33-34页 |
| 第三章 叶绿素荧光参数测定 | 第34-38页 |
| ·材料与方法 | 第34-35页 |
| ·藻种、试剂及仪器 | 第34页 |
| ·藻种的培养方法 | 第34页 |
| ·试验方法 | 第34-35页 |
| ·处理条件 | 第34-35页 |
| ·叶绿素荧光参数的测定 | 第35页 |
| ·数据统计分析 | 第35页 |
| ·结果与讨论 | 第35-37页 |
| ·缺氮、高光和高光缺氮胁迫对 PSII 光化学效率的影响 | 第35-37页 |
| ·结论 | 第37-38页 |
| 第四章 雨生红球藻在不同胁迫条件下色素含量的变化 | 第38-43页 |
| ·材料与方法 | 第38-39页 |
| ·实验材料与设备 | 第38页 |
| ·叶绿素、类胡萝卜素含量的测定 | 第38-39页 |
| ·虾青素含量的测定 | 第39页 |
| ·结果与讨论 | 第39-42页 |
| ·总类胡萝卜素和叶绿素成分分析 | 第39-41页 |
| ·胁迫条件对雨生红球藻总虾青素产量的影响 | 第41-42页 |
| ·结论 | 第42-43页 |
| 第五章 雨生红球藻类 IPP 合成途径基因的克隆及分析 | 第43-53页 |
| ·材料与方法 | 第43-50页 |
| ·实验材料与设备 | 第43-44页 |
| ·试剂及试剂盒 | 第43-44页 |
| ·仪器及软件、程序 | 第44页 |
| ·藻种的培养 | 第44页 |
| ·雨生红球藻总 RNA 提取与鉴定 | 第44-45页 |
| ·引物设计及合成 | 第45页 |
| ·CDNA 的 3’-和 5’-端进行 RACE-PCR 扩增 | 第45-47页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第47-48页 |
| ·目的片段的回收 | 第48页 |
| ·载体与目的片段连接 | 第48-49页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第49页 |
| ·挑取单菌落进行阳性检测 | 第49页 |
| ·生物信息学分析 | 第49-50页 |
| ·结果与分析 | 第50-51页 |
| ·雨生红球藻总 RNA 的提取与鉴定 | 第50页 |
| ·CDNA3’-和 5’-端 RACE-PCR 扩增及鉴定 | 第50-51页 |
| ·DXS、CMS、CMK、MCS、HDS 五个基因的同源性分析 | 第51页 |
| ·结论 | 第51-53页 |
| 第六章 雨生红球藻 IPP 合成酶系基因的表达调控分析 | 第53-62页 |
| ·材料与方法 | 第53-55页 |
| ·实验材料与设备 | 第53页 |
| ·雨生红球藻总 RNA 的提取 | 第53页 |
| ·反转录 | 第53-54页 |
| ·定量引物设计 | 第54页 |
| ·实时荧光定量 PCR 反应体系 | 第54-55页 |
| ·结果与讨论 | 第55-60页 |
| ·雨生红球藻总 RNA 的提取 | 第55页 |
| ·实时荧光定量 PCR 结果 | 第55-56页 |
| ·IPP 生物合成途径在胁迫条件诱导时的表达特征 | 第56-60页 |
| ·雨生红球藻色素的含量和 IPP 代谢途径基因表达量的线性关系 | 第60页 |
| ·胁迫条件诱导下雨生红球藻虾青素含量和 IPP 代谢途径基因表达量的线性关系 | 第60页 |
| ·胁迫诱导下雨生红球藻叶绿素和类胡萝素含量和 IPP 代谢途径基因表达量的线性关系 | 第60页 |
| ·结论 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 致谢 | 第70-72页 |
| 攻读硕士学位期间研究所发表的论文 | 第72-73页 |
