| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-14页 |
| 引言 | 第14-18页 |
| 1 微生物在水产养殖中的生物学功能及其应用 | 第14-16页 |
| ·海洋微生物的生物学功能 | 第14-15页 |
| ·微生物的定义 | 第14页 |
| ·海洋微生物的作用 | 第14-15页 |
| ·微生物在水产养殖中的应用 | 第15-16页 |
| ·微生物在水产养殖中的应用现状 | 第15页 |
| ·有益微生物在对虾养殖中的应用现状 | 第15-16页 |
| 参考文献 | 第16-18页 |
| 第一章 养殖对虾肠道优势菌种的筛选及鉴定 | 第18-22页 |
| 1 材料与方法 | 第18-19页 |
| ·健康养殖凡纳滨对虾 | 第18页 |
| ·培养基 | 第18页 |
| ·肠道样品的制备 | 第18-19页 |
| ·细菌的 16SrDNA 鉴定 | 第19页 |
| 2 结果 | 第19-20页 |
| 3 讨论 | 第20页 |
| 参考文献 | 第20-22页 |
| 第二章 应用 PCR-RFLP 和 PCR-DGGE 分析工厂化养殖对虾肠道微生物群落特征 | 第22-33页 |
| 1 材料与方法 | 第23-25页 |
| ·材料 | 第23-24页 |
| ·凡纳滨对虾肠道样品 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23页 |
| ·引物设计 | 第23-24页 |
| ·凡纳滨对虾肠道总 DNA 提取 | 第24页 |
| ·16S rDNA 基因的 PCR 扩增 | 第24页 |
| ·16S rDNA 克隆文库构建和 RFLP 分析 | 第24-25页 |
| ·16S rDNAV3 区的 PCR 扩增 | 第25页 |
| ·DGGE 图谱条带分析 | 第25页 |
| ·DGGE 条带回收和序列分析 | 第25页 |
| 2 结果 | 第25-29页 |
| ·RFLP 结果分析 | 第25-27页 |
| ·DGGE 结果分析 | 第27-29页 |
| 3 讨论 | 第29-30页 |
| 参考文献 | 第30-33页 |
| 第三章 哈氏弧菌拮抗菌的筛选与效果 | 第33-40页 |
| 1 材料与方法 | 第33-35页 |
| ·细菌的分离与培养 | 第33页 |
| ·拮抗菌的筛选 | 第33-34页 |
| ·溶血素的产生 | 第34页 |
| ·16S rDNA 鉴定 | 第34页 |
| ·菌种发酵培养 | 第34页 |
| ·饲料制备 | 第34页 |
| ·实验分组 | 第34-35页 |
| ·哈氏弧菌感染实验 | 第35页 |
| ·哈氏弧菌菌悬液的制备 | 第35页 |
| ·预感染实验 | 第35页 |
| ·注射感染实验 | 第35页 |
| 2 结果 | 第35-37页 |
| ·拮抗菌的实验结果 | 第35-36页 |
| ·16S rDNA 鉴定和系统发育树 | 第36-37页 |
| ·哈氏弧菌感染结果 | 第37页 |
| 3 讨论 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-40页 |
| 第四章 3 株海水芽孢菌的鉴定与生物学特性分析 | 第40-48页 |
| 1 材料与方法 | 第40-41页 |
| ·菌株来源及分离 | 第40页 |
| ·菌株鉴定 | 第40-41页 |
| ·革兰氏染色及形态学观察 | 第40页 |
| ·菌株的生长特性 | 第40-41页 |
| ·菌株 16S rDNA 序列分析 | 第41页 |
| ·利用 Biolog 微生物自动分析仪系统鉴定菌株 | 第41页 |
| 2 结果 | 第41-46页 |
| ·菌体形态特征 | 第41-42页 |
| ·菌株的生长曲线 | 第42-43页 |
| ·菌株 16S rDNA 序列分析与系统发育树 | 第43-45页 |
| ·菌株 Biolog 碳源利用鉴定 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 第五章 3 株共生芽孢杆菌对凡纳滨对虾抗 WSSV 感染力的影响 | 第48-53页 |
| 1 | 第48-50页 |
| ·材料与方法 | 第48-49页 |
| ·对虾 | 第48-49页 |
| ·菌种的来源及发酵培养 | 第49页 |
| ·饲料制备 | 第49页 |
| ·实验分组 | 第49页 |
| ·WSSV 感染实验 | 第49-50页 |
| ·WSSV 粗提液制备 | 第49-50页 |
| ·注射感染实验 | 第50页 |
| ·数据分析 | 第50页 |
| 2 结果 | 第50-51页 |
| ·凡纳滨对虾抗 WSSV 病毒感染力及累积死亡率结果 | 第50-51页 |
| 3 讨论 | 第51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 第六章 饲料中添加益生菌对凡纳滨对虾肠道相关基因分子表达水平的影响 | 第53-62页 |
| 1 材料与方法 | 第54-56页 |
| ·实验材料同第五章 1.1 | 第54页 |
| ·实验方法同第五章 1.2 | 第54页 |
| ·WSSV 感染实验同第五章.1.4 | 第54页 |
| ·样品采集与处理 | 第54页 |
| ·感染期间的样品采集与处理 | 第54页 |
| ·免疫期间的样品采集与处理 | 第54页 |
| ·RNA 提取 | 第54页 |
| ·cDNA 合成 | 第54-55页 |
| ·实时荧光定量 PCR 分析基因表达 | 第55页 |
| ·引物 | 第55页 |
| ·实时荧光定量 PCR 反应体系和程序 | 第55页 |
| ·溶解曲线测定 | 第55页 |
| ·统计分析 | 第55-56页 |
| 2 结果 | 第56-59页 |
| ·cDNA 浓度测定 | 第56页 |
| ·包裹饲料免疫期间和感染 WSSV 后对虾肠道中凋亡基因 caspase 和免疫相关基因 trx 表达量的检测 | 第56-59页 |
| ·投喂包裹益生菌饲料感染期间对凡纳滨对虾肠道中凋亡基因 caspase表达量的影响 | 第56-57页 |
| ·投喂包裹益生菌饲料感染期间对凡纳滨对虾肠道中免疫相关基因trx表达量的影响 | 第57-58页 |
| ·投喂包裹益生菌饲料对凡纳滨对虾肠道中凋亡基因 caspase表达量的影响 | 第58页 |
| ·投喂包裹益生菌饲料对凡纳滨对虾肠道中免疫相关基因trx表达量的影响 | 第58-59页 |
| 3 讨论 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-62页 |
| 第七章 饲料中添加益生菌对凡纳滨对虾感染 WSSV 病毒增殖速率的影响 | 第62-67页 |
| 1 材料与方法 | 第62-63页 |
| 同第五章 1.1 | 第62页 |
| 同第五章 1.2 | 第62页 |
| 同第五章 1.3 | 第62页 |
| 同第五章 1.4 | 第62页 |
| ·样品采集和处理 | 第62-63页 |
| ·鳃组织 DNA 提取和浓度测定 | 第63页 |
| ·鳃组织的提取 | 第63页 |
| ·测定鳃组织基因组 DNA 浓度 | 第63页 |
| ·病毒定量检测 | 第63页 |
| ·标准品的制备 | 第63页 |
| ·WSSV 绝对定量 | 第63页 |
| 2 结果 | 第63-65页 |
| ·鳃组织 DNA 浓度 | 第63-64页 |
| ·对虾感染 WSSV 相对保护率 | 第64页 |
| ·WSSV 实时荧光定量 PCR | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65页 |
| 参考文献 | 第65-67页 |
| 附录 使用试剂的配制 | 第67-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
