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芪合酶基因Fm-STS在何首乌毛状根中过量表达与dsRNA干扰

摘要第1-7页
ABSTRACT第7-13页
第一章 绪论第13-27页
   ·何首乌概况第13-19页
     ·何首乌的主要化学成分第13-14页
     ·何首乌的药理作用第14-15页
     ·何首乌的生物技术研究第15-16页
     ·芪类次生代谢产物及其生物合成途径第16-19页
   ·dsRNA诱导RNA干扰技术第19-24页
     ·RNA干扰的原理第19-22页
     ·RNA干扰的特点第22-23页
     ·RNA干扰的应用第23-24页
     ·RNA干扰存在的问题第24页
   ·本课题的研究背景及研究意义第24-26页
     ·本课题的研究背景第24-25页
     ·本课题的研究意义第25-26页
   ·本课题的主要研究内容第26-27页
     ·技术路线第26页
     ·何首乌毛状根体系的建立第26页
     ·Fm-STS基因过量表达与RNA干扰第26页
     ·何首乌根茎叶中二苯乙烯苷的含量及Fm-STS基因的表达差异第26-27页
第二章 过量表达质粒载体及RNA干扰载体构建第27-49页
   ·前言第27-28页
   ·实验材料与试剂第28-30页
     ·实验材料第28页
     ·主要试剂第28页
     ·溶液配制第28-29页
     ·主要仪器设备第29页
     ·实验器材预处理第29-30页
   ·实验方法第30-40页
     ·提取何首乌叶片中总RNA第30-31页
     ·目的基因Fm-STS获取第31-35页
     ·dsRNA片段获取第35-36页
     ·空白表达质粒检验第36-38页
     ·过量表达质粒pBIN-35S -STS-GFP的构建第38页
     ·干扰质粒pBIN-35S-正向-反向-GFP的构建第38-40页
   ·结果分析第40-47页
     ·RNA提取完整性及空白质粒验证第40-41页
     ·芪合酶基因Fm-STS扩增第41页
     ·正向/反向片段扩增第41-42页
     ·T-A连接第42页
     ·双酶切及载体构建第42-47页
   ·讨论第47-48页
   ·本章小结第48-49页
第三章 诱导何首乌毛状根及对其进行分析第49-67页
   ·前言第49-50页
   ·实验材料与试剂第50-52页
     ·实验材料第50页
     ·主要试剂第50-51页
     ·溶液配制第51页
     ·主要仪器设备第51-52页
   ·实验方法第52-58页
     ·转化野生型发根农杆菌第52-54页
     ·诱导毛状根第54-55页
     ·培养毛状根第55页
     ·毛状根检测第55-56页
     ·HPLC之标准曲线制作第56页
     ·HPLC测定毛状根中二苯乙烯苷含量第56页
     ·毛状根中RNA提取第56-57页
     ·Realtime PCR 测定芪合酶基因Fm-STS的表达差异第57-58页
   ·结果与分析第58-65页
     ·毛状根初期及检测第58页
     ·毛状根中RNA完整性检测第58-59页
     ·毛状根cDNA的PCR检测第59-61页
     ·毛状根生长情况第61-62页
     ·HPLC测定毛状根中二苯乙烯苷第62-64页
     ·Realtime PCR第64-65页
   ·讨论第65-66页
   ·本章小结第66-67页
第四章 何首乌不同部位二苯乙烯苷含量以及芪合酶FM-STS时空表达差异第67-74页
   ·前言第67-68页
   ·材料与方法第68页
     ·材料第68页
     ·仪器与方法第68页
   ·何首乌根茎叶中二苯乙烯苷的检测第68-69页
     ·二苯乙烯苷标准曲线的绘制第68-69页
     ·何首乌根茎叶中二苯乙烯苷的提取与测定第69页
   ·何首乌根茎叶中芪合酶基因FM-STS的表达差异检测第69页
     ·模板获取第69页
     ·Real-time PCR分析第69页
   ·结果与分析第69-72页
     ·何首乌根茎叶中二苯乙烯苷含量第69-71页
     ·何首乌根茎叶中芪合酶基因FM-STS表达差异第71-72页
   ·结论第72-74页
结论与展望第74-78页
参考文献第78-88页
发表论文情况第88-89页
致谢第89-91页
附件第91页

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