用RAPD标记检测庙台槭自然居群的遗传结构和遗传分化
中文摘要 | 第1-7页 |
英文摘要 | 第7-9页 |
前言 | 第9-18页 |
一. 关于槭属 | 第9-10页 |
1.1 槭属的概况 | 第9页 |
1.2 槭属的研究 | 第9-10页 |
二. 关于庙台槭 | 第10-11页 |
2.1 庙台槭的概述 | 第10-11页 |
2.2 庙台槭的研究 | 第11页 |
三. 庙台槭生长的自然环境 | 第11-14页 |
3.1 秦岭 | 第12-13页 |
3.2 大巴山 | 第13页 |
3.3 甘肃天水 | 第13-14页 |
四. 生物多样性 | 第14-17页 |
4.1 生物多样性概述 | 第14页 |
4.2 我国生物多样性状况 | 第14页 |
4.3 生物多样性研究的主要方法 | 第14-17页 |
4.3.1 等位酶 | 第14-15页 |
4.3.2 DNA分子标记 | 第15-17页 |
4.3.2.1 RFLP | 第15-16页 |
4.3.2.2 RAPD | 第16页 |
4.3.2.3 微卫星DNA | 第16-17页 |
4.3.2.4 AFLP | 第17页 |
4.3.2.5 DNA序列的测定 | 第17页 |
五. 本文研究内容、目的及意义 | 第17-18页 |
材料与方法 | 第18-23页 |
一. 材料 | 第18页 |
1.1 材料的采集 | 第18页 |
1.2 材料的生境及生长状况 | 第18页 |
二. 方法 | 第18-23页 |
2.1 总DNA的提取 | 第18-19页 |
2.2 总DNA纯度、浓度检测 | 第19-20页 |
2.2.1 DNA的电泳检测 | 第19页 |
2.2.2 DNA的分光光度计检测 | 第19-20页 |
2.3 引物筛选 | 第20页 |
2.4 扩增反应 | 第20-21页 |
2.5 扩增产物的电泳检测 | 第21页 |
2.6 数据统计 | 第21-23页 |
2.6.1 带的记录 | 第21页 |
2.6.2 多态位点比率 | 第21页 |
2.6.3 Shannon多样性指数 | 第21页 |
2.6.4 Nei的遗传分化指数 | 第21-22页 |
2.6.5 居群每代迁移数 | 第22页 |
2.6.6 群间、个体间遗传距离与聚类分析 | 第22页 |
2.6.7 主成分分析 | 第22-23页 |
试剂、药品与仪器 | 第23-24页 |
一. 主要试剂配方 | 第23页 |
1.1 DNA提取液组成成分 | 第23页 |
1.2 DNA洗涤缓冲液组成成分 | 第23页 |
1.3 蛋白抽提液 | 第23页 |
1.4 点样染料组成成分 | 第23页 |
1.5 TAE电泳缓冲液组成成分 | 第23页 |
1.6 随机引物 | 第23页 |
二. 主要药品 | 第23页 |
三. 主要实验仪器 | 第23-24页 |
结果与分析 | 第24-35页 |
一. 总DNA提取结果及其分析 | 第24页 |
二. RAPD体系优化结果 | 第24-28页 |
2.1 模板DNA的浓度 | 第24-25页 |
2.2 模板DNA的纯度、大小 | 第25-26页 |
2.3 Taq酶的浓度 | 第26页 |
2.4 dNTP的浓度 | 第26页 |
2.5 Mg~(2+)的浓度 | 第26-27页 |
2.6 引物的浓度 | 第27页 |
2.7 扩增程序 | 第27-28页 |
三. 遗传多样性水平的度量 | 第28-31页 |
3.1 多态位点比率 | 第29-30页 |
3.2 条带共享率 | 第30页 |
3.3 Shaanon多样性指数 | 第30-31页 |
四. 种内遗传关系 | 第31-34页 |
4.1 居群间的遗传关系 | 第31-33页 |
4.2 个体间的遗传关系 | 第33-34页 |
五. 遗传变异与生境的关系 | 第34-35页 |
讨论 | 第35-40页 |
一. 植物材料 | 第35-36页 |
二. DNA提取 | 第36页 |
三. 自然居群的遗传结构和遗传分化 | 第36-38页 |
3.1 庙台槭自然居群的遗传多样性水平 | 第36-37页 |
3.2 庙台槭自然居群间的遗传分化 | 第37-38页 |
四. 致濒因素 | 第38-39页 |
五. 遗传多样性保护 | 第39-40页 |
结论 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-46页 |
致谢 | 第46-47页 |
附图 | 第47-50页 |