含羟基和咪唑基团手性肽核酸的设计、合成及亲和性初步探讨
| 1 前言 | 第1-33页 |
| 1．1 PNA的结构特点 | 第11-12页 |
| 1．2 PNA与互补序列的亲和性 | 第12-15页 |
| 1．3 PNA的结构改造与修饰 | 第15-21页 |
| 1．4 PNA的性质 | 第21-22页 |
| 1．5 PNA的应用 | 第22-24页 |
| 1．6 研究课题设计思想 | 第24-26页 |
| 参考文献 | 第26-33页 |
| 2 肽核酸单体的合成 | 第33-83页 |
| 2．1 设计思想 | 第33页 |
| 2．2 合成路线设计 | 第33-37页 |
| 2．2．1 含丝氨酸残基的肽核酸单体的合成方法 | 第33-34页 |
| 2．2．2 含组氨酸残基的肽核酸单体的合成方法 | 第34-37页 |
| 2．2．3 自制部分试剂 | 第37页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第37-39页 |
| 2．4 实验部分 | 第39-55页 |
| 2．4．1 主要试剂及分析仪器 | 第39-40页 |
| 2．4．2 无水试剂的处理方法 | 第40页 |
| 2．4．3 肽核酸单体及中间体的合成 | 第40-55页 |
| 参考文献 | 第55-56页 |
| 2．5 附图 | 第56-83页 |
| 3 手性肽核酸的设计、合成 | 第83-98页 |
| 3．1 手性肽核酸的设计 | 第83-84页 |
| 3．2 手性肽核酸的合成 | 第84-85页 |
| 3．2．1 实验仪器 | 第84页 |
| 3．2．2 固相合成 | 第84-85页 |
| 3．2．3 从树脂上裂解 | 第85页 |
| 3．3 手性肽核酸的分离纯化及结构鉴定 | 第85-96页 |
| 3．3．1 凝胶层析 | 第85页 |
| 3．3．2 液相色谱分析条件 | 第85-86页 |
| 3．3．3 手性肽核酸的分离纯化及结构鉴定 | 第86-96页 |
| 3．4 讨论 | 第96-98页 |
| 3．4．1 固相缩合反应 | 第96页 |
| 3．4．2 固相缩合反应的监测 | 第96-97页 |
| 3．4．3 保护基的脱除 | 第97-98页 |
| 4 手性肽核酸亲和性初步探讨 | 第98-112页 |
| 4．1 实验设计 | 第98页 |
| 4．2 实验部分 | 第98-99页 |
| 4．2．1 主要仪器及试剂 | 第98页 |
| 4．2．2 实验方法 | 第98-99页 |
| 4．3 结果与讨论 | 第99-108页 |
| 4．3．1 dT_(10)/dA_(10) | 第99页 |
| 4．3．2 T．A杂交复合物 | 第99-103页 |
| 4．3．3 T．A．T杂交复合物 | 第103-107页 |
| 4．3．4 单链熔解曲线的测定 | 第107-108页 |
| 4．4 参考性结论 | 第108-110页 |
| 4．4．1 PNA与互补DNA的亲和性 | 第108-109页 |
| 4．4．2 PNA与互补PNA的亲和性 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-112页 |
| 5 结论 | 第112-114页 |
| 致谢 | 第114-115页 |
| 博士生期间发表的学术论文，专著 | 第115-116页 |
| 博士后期间发表的学术论文，专著 | 第116-117页 |
