非水相中固定化脂肪酶拆分（±）-薄荷醇的研究
| 第一章 文献综述 | 第1-26页 |
| ·引言 | 第7页 |
| ·固定化酶技术 | 第7-15页 |
| ·固定化酶的优越性 | 第8页 |
| ·酶的固定化方法 | 第8-11页 |
| ·脂肪酶在非水相中的固定化 | 第11-13页 |
| ·固定化载体 | 第13-14页 |
| ·固定化酶的性质 | 第14-15页 |
| ·非水相中的酶催化反应 | 第15-21页 |
| ·必需水 | 第16-18页 |
| ·溶剂影响 | 第18-19页 |
| ·载体影响[48， | 第19页 |
| ·pH值影响 | 第19-20页 |
| ·缓冲液浓度的影响 | 第20页 |
| ·酶的形态 | 第20-21页 |
| ·酶催化的手性拆分 | 第21-25页 |
| ·手性拆分的分析 | 第21-22页 |
| ·醇的拆分 | 第22-24页 |
| ·酰基供体的选择 | 第24-25页 |
| ·本文的主要工作 | 第25-26页 |
| 第二章 磁性纳米载体及其性能 | 第26-33页 |
| ·引言 | 第26-27页 |
| ·材料与方法 | 第27-29页 |
| ·试剂与仪器 | 第27页 |
| ·实验方法 | 第27-29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-32页 |
| ·磁性微粒Fe3O4的制备 | 第29页 |
| ·载体制备方法的优化 | 第29-30页 |
| ·载体性能表征 | 第30-32页 |
| ·本章结论 | 第32-33页 |
| 第三章 脂肪酶的固定化 | 第33-41页 |
| ·前言 | 第33页 |
| ·试剂与仪器 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·溶液的配制 | 第34-35页 |
| ·酶活性测量方法 | 第35页 |
| ·蛋白含量测定方法 | 第35页 |
| ·固定化方法 | 第35-36页 |
| ·结果与讨论 | 第36-40页 |
| ·酶活性测量方法的确定 | 第36-38页 |
| ·月桂酸对固定化酶活性的影响 | 第38页 |
| ·固定化过程的优化 | 第38-39页 |
| ·pH值对酶活性及其稳定性的影响 | 第39-40页 |
| ·本章结论 | 第40-41页 |
| 第四章 非水相中(±)-薄荷醇的酶催化拆分 | 第41-53页 |
| ·前言 | 第41-42页 |
| ·材料与方法 | 第42-44页 |
| ·试剂与仪器 | 第42-43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-52页 |
| ·薄荷醇和薄荷丙酸酯的色谱分析 | 第44-46页 |
| ·酯化反应的研究 | 第46-52页 |
| ·固定化酶的操作稳定性 | 第52页 |
| ·本章结论 | 第52-53页 |
| 第五章 结论 | 第53-54页 |
| ·结论 | 第53页 |
| ·展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-60页 |
| 攻读硕士学位期间主要学术成果 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
