| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-8页 |
| 第1章 文献综述 | 第8-28页 |
| 引言 | 第8页 |
| ·蛋白质分离纯化的现状及发展趋势 | 第8-13页 |
| ·蛋白质分离纯化的原则 | 第8-9页 |
| ·蛋白质纯化的现状 | 第9-12页 |
| ·蛋白质过程优化 | 第12页 |
| ·蛋白质分离纯化的发展趋势 | 第12-13页 |
| ·双水相体系 | 第13-24页 |
| ·双水相的种类及特点 | 第14-16页 |
| ·双水相成相机理 | 第16页 |
| ·双水相相图 | 第16-17页 |
| ·双水相分配萃取原理及其影响因素 | 第17-19页 |
| ·双水相体系萃取的特点 | 第19-20页 |
| ·双水相萃取分离技术研究现状及发展趋势 | 第20-22页 |
| ·双水相萃取技术的局限 | 第22-23页 |
| ·双水相体系展望(双水相萃取技术与其他分离过程集成藕合强化分离效率) | 第23-24页 |
| ·L-天冬酰胺酶简介 | 第24-25页 |
| ·L-天冬酰胺酶的分离纯化 | 第25-27页 |
| ·本课题研究的内容 | 第27-28页 |
| 第2章 高压匀浆破释放L—天冬酰胺酶 | 第28-36页 |
| ·实验试剂 | 第28-29页 |
| ·主要实验设备及仪器 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-31页 |
| ·大肠杆菌菌体培养 | 第29页 |
| ·高压匀浆破碎菌体细胞释放L—天冬酰胺酶 | 第29页 |
| ·原液收集 | 第29-30页 |
| ·分析方法 | 第30-31页 |
| ·结果与分析 | 第31-35页 |
| ·匀浆操作压力对细胞破碎过程的影响 | 第31-32页 |
| ·高压匀浆的悬浮液体对L—天冬酰胺酶活性的影响 | 第32-35页 |
| ·小结 | 第35-36页 |
| 第3章 双水相成相物对L—天冬酰胺酶在高压匀浆体系中的酶活特性的影响 | 第36-43页 |
| ·实验试剂 | 第36-37页 |
| ·实验设备及仪器 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-38页 |
| ·大肠杆菌菌体培养 | 第37页 |
| ·高压匀浆破碎菌体细胞释放L-天冬酰胺酶 | 第37-38页 |
| ·菌体收集 | 第38页 |
| ·双水相成相物对L—天冬酰胺酶在高压匀浆体系中的酶活性特性释放 | 第38页 |
| ·L—天冬酰胺酶及蛋白质总量分析方法 | 第38页 |
| ·实验结果与分析 | 第38-41页 |
| ·成相聚合物对L—天冬酰胺酶活性释放的影响 | 第39-40页 |
| ·KH_2PO4和K_2HPO_4混合溶液对L—天冬酰胺酶活性释放的影响 | 第40-41页 |
| ·小结 | 第41-43页 |
| 第4章 PEO-PPO-PEO/KHP双水相耦合高压匀浆技术释放L—天冬酰胺酶 | 第43-54页 |
| ·实验试剂 | 第43-44页 |
| ·实验设备 | 第44页 |
| ·实验方法 | 第44-46页 |
| ·大肠杆菌菌体菌体收集及粗酶制备 | 第44-45页 |
| ·L—天冬酰胺酶的分配系数 | 第45页 |
| ·回收PEO-PPO-PEO | 第45页 |
| ·L—天冬酰胺酶在HPH耦合PEO-PPO-PEO/KHP双水相体系的释放 | 第45页 |
| ·分析 | 第45-46页 |
| ·公式 | 第46页 |
| ·实验结果与讨论 | 第46-51页 |
| ·L—天冬酰胺酶在PEO-PPO-PEO/KHP双水相释放 | 第46-48页 |
| ·PEO-PPO-PEO聚合物的回收 | 第48-49页 |
| ·L—天冬酰胺酶在高压匀浆耦合双水相萃取技术释放特性 | 第49-51页 |
| ·双水相萃取(ATPE)耦合高压匀浆(HPH) | 第51-53页 |
| ·小结 | 第53-54页 |
| 第5章 结论与展望 | 第54-56页 |
| ·本论文的主要结论 | 第54-55页 |
| ·后续研究展望 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第63页 |
