| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 综述 | 第12-23页 |
| 1 缢蛏的生物学特点 | 第12-13页 |
| ·缢蛏的形态特征 | 第12-13页 |
| ·缢蛏的生态 | 第13页 |
| 2 缢蛏的生产现状 | 第13-15页 |
| ·缢蛏肉的加工 | 第14页 |
| ·缢蛏壳的利用 | 第14页 |
| ·存在的问题 | 第14-15页 |
| 3 贝类多糖的研究概述 | 第15-21页 |
| ·贝类多糖的来源 | 第15页 |
| ·贝类多糖提取方法的研究进展 | 第15-17页 |
| ·贝类多糖纯化方法的研究进展 | 第17-18页 |
| ·贝类多糖的生物学活性 | 第18-21页 |
| 4 缢蛏多糖研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第一章 缢蛏多糖提取工艺的研究 | 第23-34页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| ·试验试剂 | 第23页 |
| ·试验材料 | 第23-24页 |
| ·试验仪器 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-27页 |
| ·缢蛏多糖提取工艺流程 | 第24-25页 |
| ·缢蛏多糖提取工艺条件 | 第25-26页 |
| ·缢蛏粗多糖含量的测定 | 第26-27页 |
| 3 结果与分析 | 第27-32页 |
| ·单因素对缢蛏多糖提取量的影响 | 第27-30页 |
| ·多因素对缢蛏多糖含量提取量的影响 | 第30-31页 |
| ·多糖含量的测定 | 第31-32页 |
| 4 讨论 | 第32-33页 |
| ·试验素材的选择 | 第32页 |
| ·提取方法的研究 | 第32页 |
| ·苯酚-硫酸法测定多糖含量 | 第32-33页 |
| 5 小结 | 第33-34页 |
| 第二章 缢蛏多糖的分离纯化 | 第34-40页 |
| 1 材料 | 第34-35页 |
| ·试验试剂与材料 | 第34页 |
| ·试验仪器 | 第34-35页 |
| 2 方法 | 第35-36页 |
| ·缢蛏粗多糖的纯化 | 第35-36页 |
| ·缢蛏多糖纯度鉴定 | 第36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-38页 |
| ·缢蛏多糖的纯化 | 第36-38页 |
| ·缢蛏多糖的纯度鉴定 | 第38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 缢蛏多糖体外抗氧化活性研究 | 第40-46页 |
| 1 试验动物、试剂和仪器 | 第40-41页 |
| ·试验动物 | 第40页 |
| ·试验试剂 | 第40页 |
| ·主要仪器 | 第40-41页 |
| 2 试验方法 | 第41-42页 |
| ·缢蛏多糖体外抗羟基自由基的试验 | 第41页 |
| ·缢蛏多糖体外清除超氧离子的试验 | 第41页 |
| ·缢蛏多糖体外抗肝组织自发性脂质过氧化作用 | 第41-42页 |
| ·缢蛏多糖对抗H_2O_2 诱导红细胞氧化溶血作用的影响 | 第42页 |
| ·数据分析 | 第42页 |
| 3 结果与分析 | 第42-44页 |
| ·缢蛏多糖LPS-I 对对OH 的清除作用 | 第42页 |
| ·缢蛏多糖LPS-I 对O2.-的清除作用 | 第42-43页 |
| ·缢蛏多糖LPS-I 体外抗肝组织自发性脂质过氧化作用的影响 | 第43-44页 |
| ·缢蛏多糖LPS-I 对抗H_2O_2 诱导红细胞氧化溶血作用的影响 | 第44页 |
| 4 讨论 | 第44-45页 |
| 5 小结 | 第45-46页 |
| 第四章 缢蛏多糖结构和理化性质的初步研究 | 第46-55页 |
| 1 材料和仪器 | 第46页 |
| ·材料和试剂 | 第46页 |
| ·仪器 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-49页 |
| ·多糖理化性质的鉴定 | 第46-47页 |
| ·紫外光谱分析 | 第47页 |
| ·红外光谱分析 | 第47-48页 |
| ·测定LPS-Ⅰ的单糖组成 | 第48-49页 |
| 3 结果与分析 | 第49-54页 |
| ·缢蛏多糖LPS-Ⅰ的鉴定 | 第49页 |
| ·缢蛏多糖LPS-Ⅰ紫外吸收光谱 | 第49-50页 |
| ·缢蛏多糖LPS-Ⅰ红外光谱分析 | 第50-52页 |
| ·缢蛏多糖单糖组成分析 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54页 |
| 5 小结 | 第54-55页 |
| 结论 | 第55-56页 |
| 本研究的特色和创新之处 | 第56页 |
| 有待进一步深入研究的问题 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 缩略词表 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
