| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-7页 |
| 1 引言 | 第7-14页 |
| ·枸杞概述 | 第7-8页 |
| ·枸杞的来源、分布与生长习性 | 第7页 |
| ·枸杞的使用历史 | 第7页 |
| ·枸杞的有效成分 | 第7-8页 |
| ·枸杞中糖类的研究现状 | 第8-9页 |
| ·枸杞中单糖的研究现状 | 第8页 |
| ·枸杞中低聚糖的研究现状 | 第8页 |
| ·枸杞中多糖的研究现状 | 第8-9页 |
| ·枸杞中生物碱的研究现状 | 第9-10页 |
| ·植物中有效成分的提取分离方法 | 第10-12页 |
| ·溶剂提取 | 第10页 |
| ·超声波辅助提取 | 第10-11页 |
| ·酶法提取 | 第11页 |
| ·微波辅助提取 | 第11页 |
| ·超临界流体萃取 | 第11-12页 |
| ·其它 | 第12页 |
| ·立题背景和意义 | 第12-13页 |
| ·主要研究内容 | 第13-14页 |
| 2 实验材料与方法 | 第14-22页 |
| ·实验材料与仪器 | 第14页 |
| ·实验材料 | 第14页 |
| ·实验仪器 | 第14页 |
| ·实验方法 | 第14-22页 |
| ·枸杞水溶成分的提取工艺 | 第14-16页 |
| ·枸杞水提物的制备与初分 | 第16页 |
| ·枸杞多糖的分离与抑制淀粉酶体外消化的试验 | 第16-19页 |
| ·低聚糖的分离与结构鉴定 | 第19-20页 |
| ·生物碱的分离与结构鉴定 | 第20-22页 |
| 3 结果与讨论 | 第22-39页 |
| ·水溶性成分的提取工艺 | 第22-25页 |
| ·影响多糖提取的单因素试验 | 第22-24页 |
| ·正交试验的设计及结果 | 第24-25页 |
| ·枸杞水提物的制备与初分 | 第25-26页 |
| ·枸杞水提物大孔吸附树脂的分离 | 第25页 |
| ·枸杞水提物的分离流程图 | 第25-26页 |
| ·枸杞多糖的分离与抑制淀粉酶体外消化的试验 | 第26-29页 |
| ·A-2 部分DEAE-纤维素柱色谱分离 | 第26-27页 |
| ·酶的最适pH 值的确定 | 第27页 |
| ·酶的添加量的确定 | 第27-28页 |
| ·A-2 不同的洗脱组分抑制淀粉酶体外消化试验 | 第28页 |
| ·反应时间对多糖抑制淀粉酶活力的影响 | 第28-29页 |
| ·LBP2 分子量测定 | 第29页 |
| ·低聚糖的分离与结构鉴定 | 第29-34页 |
| ·A-1 部分的HPLC 分析 | 第29-30页 |
| ·A-1 部分DEAE-5PW(30)柱色谱分离 | 第30页 |
| ·A-1-2 部分HW-55F 柱色谱分离 | 第30-31页 |
| ·A-1-2-2 、A-1-3 部分HW-40F 柱色谱分离 | 第31-32页 |
| ·化合物Ⅰ、Ⅱ的分子量测定 | 第32页 |
| ·化合物Ⅰ、Ⅱ的结构鉴定 | 第32-34页 |
| ·生物碱的分离与结构鉴定 | 第34-37页 |
| ·B 部分DEAE-纤维素柱色谱分离 | 第34页 |
| ·B-2 HW-40F 柱色谱分离 | 第34-35页 |
| ·D 部分MCI 柱色谱分离 | 第35页 |
| ·D-1，D-2 部分ODS 柱色谱分离 | 第35-36页 |
| ·化合物Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ的结构鉴定 | 第36-37页 |
| ·主要结论 | 第37-38页 |
| ·主要不足与展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第43-44页 |
| 附录：化合物核磁共振谱图 | 第44-53页 |